1 
 
 
 
Uso de dietas enriquecidas con  nucleótidos y/o vitaminas  y su efecto en la calidad 
de la  reproducción de trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss) en la Hcda. El Prado 
 
Castro Flores, Kevin Alberto 
 
 
Departamento de Ciencias de la Vida y la Agricultura 
 
Carrera de Ingeniería Agropecuaria 
 
Trabajo de titulación, previo a la obtención del título de Ingeniero Agropecuario  
 
Ing. Ortiz Tirado, Juan Cristóbal, PhD. 
 
Agosto 2021 
 
2 
 
Reporte Urkund  
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
3 
 
ERT                    
Certificación 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
4 
 
RESPONSABILIDAD DE AUTORÍA 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
5 
 
 
AUTORIZACIÓN DE PUBLICACIÓN  
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
6 
 
DEDICATORIA 
 
A mis padres, quienes día a día me alentaron para cumplir mis sueños 
A mi hermano quien con su alegría me permitió seguir adelante 
A mi mamita Fanny que desde el cielo me cuida  
A mi eterno amor Elizabeth  
A mi Familia  
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
7 
 
AGRADECIMIENTO 
Agradezco al Doctor Juan Ortiz por permitirme realizar mi proyecto de titulación y quien con 
paciencia supo guiarme con sus conocimientos para la culminación de mi proyecto 
A la Ingeniera Daysi Muñoz quien me abrió las puertas del laboratorio de Recursos Acuáticos 
y quien con su guía me permitió culminar el trabajo de titulación 
A mi madre Rosario quien con su constante apoyo, amor y dedicación supo guiarme para 
poder culminar esta etapa de mi vida, gracias por ser siempre mi norte y guiarme día a día 
para ser un hombre de bien, Te amo.  
A mi padre Winston quien con su esfuerzo y amor me permitió cumplir mis sueños, gracias 
por ser un gran ejemplo, Te amo. 
A mi hermano Nicolás quien con sus ocurrencias, su amor y su inocencia me ayudo a ser una 
mejor persona, luchar por mis sueños y seguir adelante día a día, Te amo.  
A mi mamita Fanny no me alcanzaran nunca las palabras para agradecerte por todo el amor 
que me diste, gracias por cuidarme desde el cielo, Te extraño y Te amo. 
A Elizabeth mi eterno amor, gracias por formar parte de mi vida y permitirme ser parte de la 
tuya, tu constante amor y cariño me permitieron seguir adelante. Gracias por ser mi guía sin 
ti esta etapa de mi vida no podría ser cumplida, te amare toda la vida. Gracias por tanto. 
A mi ñaño Guillo, gracias por ser como un padre, nunca podré pagarte todo lo que has hecho 
por mí, gracias por tu gran corazón y tu generosidad,  Te amo.  
A mi familia Benítez Muñoz Flores Baldeon, su constante apoyo, sus palabras de aliento, sus 
consejos y su amor me alentaron a luchar cada día para llegar hasta a la meta, gracias por 
todo familia, viviré eternamente agradecido.   
Kevin Alberto Castro Flores  
 
 
 
 
8 
 
Índice de contenido 
 
Carátula ............................................................................................................................... 1 
Reporte Urkund ................................................................................................................... 2 
Certificación ........................................................................................................................ 3 
Responsabilidad de autoría ............................................................................................... 4 
Autorización de publicación .............................................................................................. 5 
Dedicatoria .......................................................................................................................... 6 
Agradecimiento ................................................................................................................... 7 
Índice de contenido ............................................................................................................ 8 
Índice de tablas ................................................................................................................. 12 
Índice de figuras ............................................................................................................... 15 
Resumen ............................................................................................................................ 19 
Abstract ............................................................................................................................. 20 
Capítulo  I .......................................................................................................................... 21 
Introducción ...................................................................................................................... 21 
Antecedentes .................................................................................................................... 21 
Justificación ...................................................................................................................... 22 
Objetivos ........................................................................................................................... 23 
Objetivo General ............................................................................................................... 23 
Objetivo Específico ........................................................................................................... 24 
Hipótesis ............................................................................................................................ 24 
 
9 
 
Capítulo II .......................................................................................................................... 26 
Revisión de la Literatura .................................................................................................. 26 
Trucha Arco Iris ................................................................................................................ 26 
Características de la reproducción .................................................................................. 27 
Proceso de espermatogénesis......................................................................................... 28 
Proceso de ovogénesis .................................................................................................... 29 
La suplementación en la reproducción de Oncorhynchus mykiss ............................... 30 
Nucleótidos ....................................................................................................................... 30 
Vitaminas ........................................................................................................................... 32 
Vitamina C (Ácido ascórbico). ............................................................................... 32 
Vitamina E (alfa tocoferol) ..................................................................................... 34 
La suplementación en alimentos relacionada al bienestar animal ................................ 36 
Capítulo III ......................................................................................................................... 39 
Metodología ....................................................................................................................... 39 
Ubicación del lugar de investigación .............................................................................. 39 
Ubicación y descripción del área de estudio .................................................................. 39 
Establecimiento del proyecto .......................................................................................... 39 
Variables a evaluar ........................................................................................................... 41 
Reproductivas ................................................................................................................... 41 
Machos. ................................................................................................................... 41 
Hembras. ................................................................................................................. 41 
Hematológicas .................................................................................................................. 42 
10 
 
Análisis de la información. ............................................................................................... 44 
Capítulo IV ......................................................................................................................... 45 
Resultados y Discusión .................................................................................................... 45 
Resultados ........................................................................................................................ 45 
Variables reproductivas Macho ....................................................................................... 45 
Volumen Seminal. .................................................................................................. 45 
Tiempo de activación. ............................................................................................ 46 
Concentración espermática.. ................................................................................. 47 
Movilidad.. ............................................................................................................... 49 
Mortalidad espermática.......................................................................................... 50 
Variables reproductivas hembra ...................................................................................... 52 
Tamaño de ova ....................................................................................................... 52 
Color de ova............................................................................................................ 53 
Peso de ovas. ......................................................................................................... 54 
Fecundidad.. ........................................................................................................... 55 
Variables hematológicas .................................................................................................. 57 
Glucosa.. ................................................................................................................. 57 
Proteína.. ................................................................................................................. 62 
Micro hematocrito.. ................................................................................................ 72 
Conteo Celular.. ...................................................................................................... 76 
Cortisol.. .................................................................................................................. 77 
Correlación de variables .................................................................................................. 81 
11 
 
Variables Hematológicas. ...................................................................................... 81 
Variables Reproductivas machos. ........................................................................ 81 
Variables Reproductivas Hembras. ....................................................................... 82 
Discusión ........................................................................................................................... 83 
Variables Reproductivas Machos .................................................................................... 83 
Volumen seminal. ................................................................................................... 83 
Tiempo de activación y concentración espermática ........................................... 83 
Movilidad y mortalidad espermática. .................................................................... 85 
Variables Reproductivas Hembras .................................................................................. 86 
Tamaño de ova. ...................................................................................................... 86 
Color de ova............................................................................................................ 87 
Peso de ova. ........................................................................................................... 87 
Fecundidad. ............................................................................................................ 88 
Proteína y albúmina. .............................................................................................. 89 
Cortisol .................................................................................................................... 90 
Capítulo V .......................................................................................................................... 93 
Conclusiones y Recomendaciones ................................................................................. 93 
Conclusiones .................................................................................................................... 93 
Recomendaciones ............................................................................................................ 94 
Bibliografía ........................................................................................................................ 96 
 
12 
 
Índice de tablas 
 
Tabla 1 Promedio ± error estándar de mortalidad de espermatozoides evaluados en        
Trucha arcoíris (Oncorhynchus kiss) ...................................................................................... 45 
Tabla 2 Promedio ± error estándar del tiempo de actividad espermática evaluada en    
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................................................ 46 
Tabla 3 Promedio ± error estándar de la concentración de espermatozoides evaluados en 
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................................................ 48 
Tabla 4 Promedio ± error estándar de la movilidad en espermatozoides evaluados en 
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................................................ 49 
Tabla 5 Promedio ± error estándar de mortalidad de espermatozoides evaluados en   
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................................................ 51 
Tabla 6 Promedio ± error estándar del tamaño de ovas de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) ................................................................................................................. 52 
Tabla 7 Promedio ± error estándar de la colorimetria,  observada en ovas de Trucha  
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 53 
Tabla 8 Promedio ± error estándar del peso de ovas observada de Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) ........................................................................................ 54 
Tabla 9 Promedio ± error estándar de la fecundidad absoluta y fecundidad relativa de 
hembras de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ............................................ 56 
Tabla 10 Promedio ± error estándar de glucosa en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 58 
Tabla 11 Promedio ± error estándar de glucosa en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 59 
Tabla 12 Promedio ± error estándar de glucosa en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 60 
13 
 
Tabla 13 Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 62 
Tabla 14 Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 63 
Tabla 15 Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 64 
Tabla 16 Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 66 
Tabla 17 Promedio ± error estándar de albúmina en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 67 
Tabla 18 Promedio ± error estándar de albumina en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 68 
Tabla 19 Promedio ± error estándar de albúmina en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 69 
Tabla 20 Promedio ± error estándar de albúmina en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 71 
Tabla 21 Promedio ± error estándar de micro hematocrito en sangre de reproductores de 
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación .......... 72 
Tabla 22 Promedio ± error estándar de micro hematocrito en sangre de reproductores  de 
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación .......... 73 
Tabla 23 Promedio ± error estándar de micro hematocrito en sangre de reproductores       
de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación ...... 74 
Tabla 24 Promedio ± error estándar de celulas sanguíneas de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss)............................................................................ 76 
Tabla 25 Promedio ± error estándar del cortisol medido en plasma sanguíneo de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo       
de evaluación ....................................................................................................... 78 
14 
 
Tabla 26 Promedio ± error estándar del cortisol medido en sangre de reproductores de 
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación .......... 79 
Tabla 27 Coeficiente de correlación de Pearson para variables hematológicas de 
Oncorhynchus mykiss .......................................................................................... 81 
Tabla 28 Coeficiente de correlación de Pearson para variables reproductivas en machos   
de Oncorhynchus mykiss...................................................................................... 82 
Tabla 29 Coeficiente de correlación de Pearson para variables reproductivas en hembras  
de Oncorhynchus mykiss...................................................................................... 82 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
15 
 
Índice de Figuras 
Figura 1.Comparación macho y hembra de Oncorhynchus mykiss .................................... 26 
Figura 2 Croquis experimental ........................................................................................... 40 
Figura 3 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el volumen seminal en 
machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ............................................ 46 
Figura 4 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el tiempo de activación   
de espermatozoides en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss ........ 47 
Figura 5 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre concentración de 
espermatozoides en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ............ 48 
Figura 6 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la movilidad de 
espermatozoides en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ............ 50 
Figura 7 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la mortalidad    
espermática en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................... 51 
Figura 8 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el tamaño de ova  en 
hembras de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ........................................... 52 
Figura 9 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre colorimetría de  ova  en 
hembras de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ........................................... 53 
Figura 10 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre peso total de   ova en  
reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) .................................. 54 
Figura 11 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre peso de 20 ovas en  
reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) .................................. 55 
16 
 
Figura 12 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la fecundidad absoluta  
en  hembras reproductoras de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ............. 56 
Figura 13 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la fecundidad relativa   
en  hembras reproductoras de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ............. 57 
Figura 14 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de 
reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) .................................. 58 
Figura 15 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de 
reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss ................................... 59 
Figura 16  Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de 
reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) .................................. 61 
Figura 17 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................... 61 
Figura 18 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................... 62 
Figura 19 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss .................................... 63 
Figura 20 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................... 65 
Figura 21 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................... 65 
Figura 22 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................... 66 
17 
 
Figura 23 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................... 67 
Figura 24 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................... 68 
Figura 25 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................... 70 
Figura 26 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................... 70 
Figura 27 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ................................... 71 
Figura 28 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre micro hematocrito en 
sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) .................. 72 
Figura 29 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre micro hematocrito en 
sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) .................. 73 
Figura 30 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre hematocrito en sangre 
de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) .............................. 75 
Figura 31 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre hematocrito en sangre 
de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) .............................. 75 
Figura 32  Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la cantidad de células 
sanguíneas de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ........... 76 
Figura 33 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el conteo celular en 
sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) .................. 77 
18 
 
Figura 34 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre cortisol en plasma 
sanguíneo de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ............. 78 
Figura 35 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre cortisol en plasma 
sanguíneo de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) ............. 80 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
19 
 
Resumen 
En la acuacultura el uso de aditivos o compuestos como suplementos alimenticios se ha 
convertido en nuevas tecnologías para poder mejorar la calidad de los parámetros 
reproductivos en diferentes especies, mejorando y asegurando así la reproducción. En el 
presente ensayo se evaluó la inclusión de vitaminas (2400 UI de vitamina C y 900 UI de 
vitamina E) y nucleótidos (4 g) en dietas balanceadas de reproductores (machos y hembras) 
de Oncorhynchus mykiss. Para el ensayo se utilizaron 36 peces adultos, donde 12 de ellos 
eran macho con un peso promedio de (600 a 800 g) y 24 hembras (en estado de 
vitelogénesis o maduración estado III), distribuidos en 24 unidades experimentales. Se 
determinaron variables reproductivas y hematológicas de cada uno de los individuos 
evaluados durante un tiempo de 90 días además se realizó un manual digital para la 
divulgación de la información. Los macho de Oncorhynchus mykiss suplementados con 
vitaminas (2400 UI de vitamina C y 900 UI de vitamina E) presentaron mejores valores 
respecto a las variables de volumen seminal (p<0.05), Tiempo de activación (p<0.05), 
Concentración espermática (p<0.05), Movilidad espermática (p<0.05) y menor cantidad en 
la mortalidad espermática (p<0.05) que el tratamiento control. Por otro lado las hembras de 
Oncorhynchus mykiss suplementadas con vitaminas (2400 UI de vitamina C y 900 UI de 
vitamina E) presentan mejores valores respecto a las variables de tamaño de ova (p<0.05), 
color de ova (p<0.05), peso de ova (p<0.05), y fecundidad tanto relativa como absoluta 
(p<0.05) que el tratamiento control. Además las variables hematológicas como glucosa, 
proteína, albumina, hematocrito, conteo de glóbulos rojo y cortisol  fue mayor en los 
reproductores de Oncorhynchus mykiss suplementados con vitaminas. 
Palabras clave: Vitaminas, Nucleótidos, Trucha arco iris, Suplementación 
 
 
 
20 
 
Abstract 
In aquaculture, the use of additives or compounds as feed supplements has become new 
technologies to improve the quality of reproductive parameters in different species, thus 
improving and assuring reproduction. In the present trial, the inclusion of vitamins (2400 UI 
of vitamin C and 900 UI of vitamin E) and nucleotides (4 g) in balanced diets of 
Oncorhynchus mykiss broodstock (males and females) was evaluated. Thirty-six adult fish 
were used for the trial, where 12 of them were males with an average weight of (600 to 800 
g) and 24 females (in vitellogenesis stage or stage III maturation), distributed in 24 
experimental units. Reproductive and hematological variables were determined for each of 
the individuals evaluated during a period of 90 days and a digital manual was created for the 
dissemination of the information. The Oncorhynchus mykiss males supplemented with 
vitamins (2400 IU of vitamin C and 900 IU of vitamin E) presented better values with respect 
to the variables of seminal volume (p<0.05), activation time (p<0.05), sperm concentration 
(p<0.05), sperm motility (p<0.05) and lower sperm mortality (p<0.05) than the control 
treatment. On the other hand, Oncorhynchus mykiss females supplemented with vitamins 
(2400 IU of vitamin C and 900 IU of vitamin E) presented better values with respect to the 
variables of egg size (p<0.05), egg color (p<0.05), egg weight (p<0.05), and relative and 
absolute fecundity (p<0.05) than the control treatment. In addition hematological variables 
such as glucose, protein, albumin, hematocrit, red blood cell count and cortisol was higher in 
Oncorhynchus mykiss broodstock supplemented with vitamins. 
Keywords: Vitamins, Nucleotides, Rainbow trout, Supplementation 
21 
 
Capítulo  I 
Introducción 
Antecedentes 
Se conoce a la trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) como uno de los 
salmónidos más representativos respecto a su producción a lo largo de la serranía 
ecuatoriana (Jiménez et al., 2015). Según el censo realizado en el año 2006 por el 
Centro de Investigaciones Acuícolas (CENIAC) el Ecuador produce en promedio 
982.3 toneladas al año de esta especie. Para el año 2019 la producción aumenta a 
6000 toneladas al año representando el 1% de la producción acuícola total del 
Ecuador (FAO, 2019) .  
Se conoce que es originaria del Océano Pacífico y fue introducida en el año 
1928 a nuestro país, como parte de un programa para potenciar actividades como la 
pesca y la acuacultura en una variedad de ríos y lagos en nuestro país (Sicilia et al., 
2009). En el año 1992 el ministerio de industria, comercio, integración y pesca 
(MICIP) establece el primer programa de reproducción artificial de trucha arcoíris en 
su estación piscícola “Arco Iris” con el fin de abastecer de alevines a piscicultores 
dedicados a la cría de esta especie en la provincia de Azuay (Osorio C. et al., 2009).  
Respecto a la reproducción los machos de la trucha arco iris (Oncorhynchus 
mykiss) se caracterizan por ser de menor tamaño (Gualavisí, 2009). Una vez 
alcanzada la madurez sexual desarrollan dimorfismo sexual, dando así un proceso 
de prolongación del maxilar inferior. Los machos pueden adquirir una madurez 
sexual a los 15 o 18 meses (Hernandez & Aquino-Martínez, 2008). Sin embargo 
estudios señalan que  los machos de trucha arco iris pueden llegar a madurar 
sexualmente entre los 9 a 12 meses de edad, llegando a formar nuevos gametos 
sexuales entre los 15-25 días (Bravo, 2018). 
22 
 
Por otra parte las hembras pueden llegar a una madurez sexual en un 
mínimo de dos años. La reproducción de la trucha es sexual y externa, donde la 
hembra y el macho depositan libremente sus gametos sexuales  (espermatozoides y 
óvulos), en nidos previamente preparados por la hembra (Bastardo de C., 1994).  
Cabe señalar que la reproducción de la trucha arcoíris es cíclica, es decir que 
tiene lugar una vez al año (Blanco, 1994), dependiendo de varios factores como: 
Agua fresca, bien oxigenada, temperatura de 6-11º C, luminosidad (0-20 lux), 
oxígeno disponible a saturación (80%), cantidad y calidad de alimento (Blanco, 
1994) 
Justificación   
Las poblaciones de peces cultivados depende mucho de la calidad de la 
reproducción que esta pueda manejarse dentro de un programa asistido de 
reproducción en las diferentes explotaciones acuícolas (Kjørsvik, 2007). En el caso 
del semen este se caracteriza por presentar un color blanco, de consistencia lechosa 
en algunos casos viscosa, el cual está conformado por varios componentes entre 
ellos los espermatozoides (Bustamante et al., 2018). Por otro lado las ovas aptas 
para este proceso se caracterizan por presentar una buena coloración, con un buen 
tamaño y un estado de madurez idóneo dando así como resultado una reproducción 
exitosa (Rosado, 2019). 
Varios estudios han demostrado que la reproducción incluyendo la calidad de 
los gametos (masculinos y femeninos) se ven afectados por nutrientes como 
proteínas, lípidos, minerales, vitaminas y carbohidratos (Barber, 2005). Para el caso 
de las vitaminas se ha determinado que juegan un papel importante para la 
reproducción, como es el caso de la vitamina C, la cual ayuda a una buena 
formación y coloración de los gametos femeninos (ovas), así como también un buen 
desarrollo en el proceso de vitelogénesis (Bravo, 2018) 
23 
 
En el caso de los gametos masculinos (espermatozoides) la vitamina C actúa 
a nivel de plasma seminal, así como también protege las células del esperma 
durante el proceso de espermatogénesis hasta el momento de la fecundación 
(Ciereszko & Dabrowski, 1994). En el caso de la vitamina E su inclusión ayuda al 
aumento de lípidos totales en el óvulo, además de prevenir la degeneración 
peroxidativa de las grasas en las células, y ayudar así a la sobrevivencia larvaria 
reduciendo la probabilidad de anormalidades (Robles, 2020). 
En el caso del macho la inclusión de vitamina E ayuda a la motilidad de los 
espermatozoides debido a su acción antioxidante (Ubilla & Valdebenito, 2011). Por 
otro lado la inclusión de nucleótidos en dietas para Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) ayuda a la inmunología de esta especie, puesto que esta otorga una 
resistencia ante infecciones (virales, bacterianas y parasitarias) que comúnmente 
pueden afectar a la producción acuícola (Burrells et al., 2001) 
Por lo tanto el presente estudio busca evaluar cómo influye la aplicación de 
nucleótidos, vitamina C y vitamina E en los parámetros reproductivos y 
hematológicos en reproductores de Oncorhynchus mykiss. Se cree que los 
reproductores de Oncorhynchus mykiss suplementados con nucleótidos, vitamina C 
y vitamina E durante la etapa de maduración sexual mejoran la calidad de sus 
gametos sexuales y perfil hematológico en comparación a los reproductores no 
suplementados. 
Objetivos  
 
Objetivo General   
 
Evaluar el efecto de dietas enriquecidas con nucleótidos y/o vitaminas sobre 
la calidad de la reproducción y el perfil hematológico  de  trucha arco iris durante la 
maduración sexual (Oncorhynchus mykiss)  
24 
 
Objetivo Específico  
 
Determinar el efecto de nucleótidos, vitamina C y vitamina E sobre 
parámetros reproductivos en machos y hembras de trucha arco iris (Oncorhynchus 
mykiss) durante la etapa de maduración sexual 
Evaluar el perfil hematológico en machos y hembras de trucha arco iris 
(Oncorhynchus mykiss) suplementados con nucleótidos, vitamina C y vitamina E 
durante la etapa de maduración sexual.  
Elaborar una guía digital para la transferencia de tecnología sobre la 
suplementación de nucleótidos, vitamina C y vitamina E en trucha Arco iris 
(Oncorhynchus mykiss) desarrollado en el laboratorio de Recursos acuáticos de la 
ESPE  
Hipótesis 
H0: Los reproductores machos de Oncorhynchus mykiss suplementados con 
nucleótidos y/o vitaminas durante la etapa de maduración sexual presentan similar 
mortalidad espermática que los reproductores machos no suplementados  
H1: Los reproductores machos de Oncorhynchus mykiss suplementados con 
nucleótidos y/o vitaminas durante la etapa de maduración sexual presentan  mayor 
mortalidad espermática que los reproductores machos no suplementados 
H0: Las reproductoras hembras de Oncorhynchus mykiss suplementadas con 
nucleótidos y/o vitaminas durante la etapa de maduración sexual presentan similar 
diámetro de ova que las reproductoras hembras no suplementadas 
H1: Las reproductoras hembras de Oncorhynchus mykiss suplementadas con 
nucleótidos y/o vitaminas durante la etapa de maduración presentan mayor diámetro 
de ova que las reproductoras hembras no suplementadas 
25 
 
H0: Los reproductores de Oncorhynchus mykiss suplementados con nucleótidos 
y/o vitaminas durante la etapa de maduración sexual presentan similar cantidad de 
cortisol que reproductores no suplementados 
H1: Los reproductores de Oncorhynchus mykiss suplementados con nucleótidos 
y/o vitaminas durante la etapa de maduración sexual presentan mayor cantidad de 
cortisol que reproductores no suplementados  
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
26 
 
Capítulo II 
Revisión de la Literatura 
Trucha Arco Iris 
La trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss) pertenece al grupo de los 
salmónidos, originario de América del norte (Ramírez, 2016). Su nombre se atribuye 
al color presente en su piel (Figura 1), el cual puede variar dependiendo del medio, 
la talla el sexo, el tipo de alimentación e incluso el grado de maduración sexual que 
esté presente (Blanco, 1994) 
Figura 1 
Comparación macho y hembra de Oncorhyncus mykiss (Chabela, 2020) 
 
 
 
 
 
Su cuerpo se encuentra cubierto por escamas finas de forma fusiforme (forma de 
huso). La trucha arco iris se encuentra en ambientes naturales como cascadas y 
lagos en zonas de alta montaña, donde predominan aguas frías y claras, siendo así 
adaptadas a regiones elevadas y de montaña (Padrón & Lacruz, 2010). 
De acuerdo a la  (FAO, 2005) la clasificación taxonómica es: 
Orden            : Salmoniformes 
Familia           : Salmonidae 
Subfamilia      : Salmoninae 
27 
 
Espécie          : Oncorhynchus mykiss 
Nombre común: Trucha  arco iris 
Características de la reproducción  
Al ser un salmónido su reproducción es sexual y externa, de esta manera la 
hembra y el macho depositan libremente sus gametos sexuales 
(espermatozoides y óvulos) en ríos, lagos, arroyos, etc  preparando nichos que 
permitan resguardar a los futuros alevinos (Hernandez & Aquino-Martínez, 2008) 
Algo muy peculiar es que presentan un gonocorismo indiferenciado, esto quiere 
decir que durante los primeros estadios de vida no presentan una diferencia 
sexual, esto refiere a que microscópicamente sus glándulas sexuales no podrán 
distinguirse hasta los cuatro meses entre testículos u ovarios (Cuevas, 2013).  
Su reproducción también se caracteriza por ser cíclica, esto quiere decir que 
se da una vez al año y en una época determinada, por lo general el desove de 
este salmónido se da en el periodo comprendido entre los meses de noviembre a 
febrero, cabe recalcar que este proceso reproductivo está sujeto a la influencia 
de las condiciones ambientales (Blanco, 1994) 
La etapa de reproducción presenta una sintomatología, la hembra presenta 
un vientre notoriamente ensanchado (debido a que aloja los huevos), el poro 
genital se vuelve turgente y se torna de color rosáceo. Por otro lado el macho 
sufre un alargamiento en su cuerpo y su aleta dorsal se torna de un color 
blanquecino (Batallas, 2018). 
La cantidad de ovas obtenidas depende de las características que pueda 
presentar una hembra, hembras jóvenes podrán desovar de 1000 a 1500 huevos 
por kilogramo de peso, hembras de dos a tres años y con pesos que van de 1 kg 
a 2 kg podrán desovar en promedio 3000 a 3500 huevos (Vargas, 2003). 
28 
 
El macho por otro lado en su líquido seminal presenta una alta concentración, 
la cual puede oscilar entre  9 y 26 x 109 espermatozoos/mL indiscriminadamente 
del peso del animal, más sin embargo su madurez será un factor importante para 
la obtención de sus gametos (Bastardo et al., 2004). Según Ortiz, (2020)  el 
macho puede ser apto para la producción de espermatozoides entre los 9 a 12 
meses de vida. 
Proceso de espermatogénesis 
En el caso de los salmónidos dentro de los testículos se pueden identificar: 
espermatogonias, espermatocitos, espermátides y espermatozoides. En el 
proceso de espermatogénesis las espermatogonias, conocidas como las células 
madres (espermatogonias primarias) en cada proceso de mitosis son renovadas, 
dando lugar a otras espermatogonias (Mantra, 2009). 
Durante la espermatogénesis, las espermatogonias reduce el diámetro del 
núcleo finalizando con la formación de las espermátides (células haploides), 
estas espermátides son liberadas en los túbulos seminíferos donde se realizará 
el proceso de espermatogénesis dando así origen a los espermatozoides 
(Tabares et al., 2005).  
Existen procesos primordiales que inician y finalizan el ciclo testicular; estos 
procesos son conocidos como espermatogénesis y espermiación (Bastardo 
et al., 2004). La espermatogénesis se caracteriza por la formación de células 
sexuales o espermatozoos y la espermiación refiere a la liberación de las células 
desde los testículos (Velasco, 2015). 
La espermatogénesis se inicia cuando la GTH-I actúa sobre las células de 
Leydig iniciando así la producción de keto-testosterona dando así la señal de 
maduración testicular. Una vez alcanzados los niveles plasmáticos más altos de 
GTH-I inicia la fase de espermiación, de esta manera se estimula la producción 
29 
 
de la 17 alfa 20 beta dihidroxiprogesterona, la cual ayuda en el transporte de 
sodio y potasio requeridos para conservar e inmovilizar a los espermatozoides 
(Díaz & Neira, 2020). Estos dos estadios se ven temporalmente distanciados por 
un estadio de maduración entre espermatozoo, durante el cual estos 
experimentan cambios fisiológicos, esto quiere decir que un nuevo ciclo de 
espermiación se da únicamente cuando los espermatozoos se han liberado de 
los testículos (sea por un proceso normal de expulsión/extracción o reabsorción 
intratesticular) (Billard, 1992).  
Proceso de ovogénesis 
El proceso de maduración en los ovarios de peces se conoce como 
ovogénesis, este proceso tiene dos fases las cuales son: Pre-vitelogénesis y 
vitelogénesis, estos procesos comprenden seis estadios (Salamanca, 2020). 
Para el caso de la trucha arco iris la ovogénesis se da de manera sincrónica, 
esto quiere decir que todos los ovocitos tendrán un mismo estado de desarrollo, 
dando así como resultado una puesta total de todos sus gametos (L. W. 
González & Lugo, 1997). 
Dentro del proceso de ovogénesis actúa el sistema neuroendocrino, sistema 
en el cual actúan hormonas del hipotálamo, la hipófisis y las gónadas. Por un 
lado el hipotálamo actúa sobre la hipófisis a manera de regulador/estimulante 
mediante la gonadotropina (Gn-RH) y como inhibidor por la dopamina (Díaz & 
Neira, 2020). Por otro lado la hipófisis produce GTH, la cual será la responsable 
de la maduración de los ovocitos, esta se presenta en forma de GTH-I y GTH-II. 
En el proceso de ovogénesis la GTH-I actúa sobre las células tecales del ovario 
y las células granulosas de los folículos, produciendo así la síntesis de 17 beta-
estradiol la cual actúa sobre el hígado dando así el inicio a la constante síntesis 
de vitelogenina en el ovocito (Lethimonier et al., 2004) . 
30 
 
Por otro lado la GTH-II se encarga de la captura de vitelogénina sanguínea 
para así incorporar al ovocito. El 17 beta-estradiol también produce una señal 
para el proceso de producción de gonadotropina, la cual ayuda al proceso de 
maduración gonadal (King & Millar, 1992). En una fase final, se da la maduración 
de los ovocitos, en donde se incrementa el nivel de GTH-I dando así un estímulo 
a las células tecales para producir 17 alfa 20 beta dihidroxiprogesterona, la cual 
se encargara de la haploidización previa a la ovulación (Díaz & Neira, 2020). 
La suplementación en la reproducción de Oncorhynchus mykiss 
 
Nucleótidos 
Se conoce como nucleótidos a todas las formas que contienen purina 
(adenina, guanina, hipoxantina y xantina) o bases pirimídinas (Uracilo, timina y 
citosina). Las purinas y las pirimidinas pueden formar nucleótidos mediante un 
enlace glucosídico entre el nitrógeno y el carbono de la pentosa dejando así al 
grupo hidroxilo se esterifique con el grupo fosfórico (Macas & Molina, 2015).  
La suplementación en reproductores puede ser muy beneficioso, por ejemplo 
en la ovogénesis, es un proceso intensivo de división celular, donde se da una 
gran formación de ácido nucleico y requiere de un alto contenido de este 
compuesto. De esta manera diversos experimentos han demostrado que la 
inclusión de nucleótidos ayuda a la calidad de las ovas, la fecundidad, la calidad 
de las larvas e incluso la supervivencia de las mismas (González, 2005).  
La inclusión de nucleótidos en dietas tiene diferentes acciones respecto a los 
reproductores, en el caso de las hembras a más de mejorar la salud del animal y 
mejorar parámetros metabólicos aporta con grandes cantidades de energía las 
cuales le sirven para el proceso de maduración gonadal; el cual será importante 
para el proceso de vitelogénesis, esto en respuesta a la canalización metabólica 
de los triglicéridos plasmáticos y el glucógeno hepático (Arshadi et al., 2018).  
31 
 
En el caso del macho, respecto a sus gametos sexuales (espermatozoides), 
este ayuda mucho  a la movilidad espermática (Pardo Carrasco & Martínez, 
2010). En salmónidos la activación espermática es un proceso que inicia con la 
disminución de potasio extracelular produciendo un choque hiposmótico  de este 
elemento generando así la reacción de movilidad en el espermatozoide (Alavi & 
Cosson, 2006).  
En este caso los nucleótidos ayudan a proporcionar la energía necesaria 
para cumplir con actividades de trabajo, fuerza y desplazamiento del 
espermatozoide, así como también ayudan a una constante fosforilación de 
proteínas las cuales permiten mantener el proceso de activación y movilidad de 
manera idónea hasta poder llegar al proceso de fecundación (Hayashi et al., 
1987). 
En lo que respecta a parámetros hematológicos, la inclusión de nucleótidos 
en la alimentación puede mejorar la capacidad metabólica de los reproductores; 
esto debido a que se da el aumento de los niveles plasmáticos de hemoglobina y 
albúmina (Kohyani et al., 2012). Por otro lado Leonardi et al (2003) señala que la 
inclusión de nucleótidos en la dieta de salmónidos ayuda a la capacidad 
osmorreguladora, así como también reduce los niveles de cortisol que se 
producen en momentos de estrés del animal.  
Los nucleótidos marca NuPro son de la casa comercial “AllTech” son 
compuestos derivados del extracto de levadura (no-GM) ricos en aminoácidos y 
péptidos de alto valor biológico, que se caracteriza por ser altamente digestibles. 
En su composición cabe recalcar que presentan entre el 5 al 7% de nucleótidos, 
50 % de proteína bruta, 30% de aminoácidos libres y 30% de péptidos. Además 
al poseer ácido glutámico, sodio y nucleótidos se ha determinado que poseen 
una elevada palatabilidad (AllTech, 2020). 
32 
 
Vitaminas  
Se conoce como vitaminas aquellas compuestos orgánicos que se pueden 
encontrar de forma natural en el hábitat donde se pueden desarrollar diferentes 
especies, las cuales son capaces de estimular prácticamente todos los procesos 
bioquímicos de un animal (Brown & Challem, 2007). Los peces pueden consumir 
estas vitaminas desde fuentes acuáticas naturales en el caso de encontrarse en 
su entorno natural o en el caso de encontrarse en criaderos mediante dietas 
preparadas o enriquecidas (Izquierdo & Fernández-Palacios, 2004).  
Se considera a un grupo de  15 vitaminas como esenciales en dietas para 
peces, sin embargo hoy en día se han determinado y estudiado que existe un 
grupo de vitaminas que influyen en mayor proporción, entre ellas tenemos: 
Retinol (Vit A), Colecalciferol (Vit D), tocoferol (Vit E), Menadiona (Vit K) y ácido 
ascórbico (Vit C) (Lazo, 2000). 
Vitamina C (Ácido ascórbico). El 2,3-enediol-Lgulónico o conocido como 
ácido ascórbico, es un compuesto hidrosoluble, el cual puede ser crítico en la 
dieta de los peces, esto debido a la incapacidad de poderlos sintetizar, a nivel 
productivo niveles deficientes de ácido ascórbico pueden producir crecimientos 
reducidos y deformidades esqueléticas (Rodríguez & Rojas, 2014). La demanda 
de ácido ascórbico en Oncorhynchus mykiss se ve aumentada en la etapa de 
reproducción, donde se observa que los requerimientos de la misma se pueden 
elevar hasta ocho veces más en relación a individuos en etapas juveniles 
(Krautz, 2015) 
Diferentes estudios demuestran que se puede incluir ácido ascórbico en 
relación de 2 a 3% del peso seco de la dieta ya que las pérdidas pueden ser del 
orden de 20 a 80% (Brown & Challem, 2007). Sin embargo (Bravo, 
2018)recomienda adicionar 2400 UI de ácido ascórbico por kilogramo de 
33 
 
alimento para reproductores generando respuestas favorables respecto a 
gametos sexuales evaluados.  
El ácido ascórbico es considerado como un elemento que puede influir en la 
reproducción de los salmónidos y mucho más cuando se trata de su 
reproducción (Orvay, 1993). Las necesidades de ácido ascórbico (vitamina C) 
puede correlacionarse con la ontogenia de los peces, como puede ser el caso de 
la maduración gonadal o el desarrollo de los futuros alevinos (Noriega et al., 
2020). 
Estudios indican que también pueden influir en la calidad de los gametos y la 
fertilización de los mismos (Gammanpila et al., 2010). En el caso de hembras 
reproductoras juega un papel importante en los procesos de esteroidogénesis y 
la vitelogénesis (Krautz, 2015). Este proceso de vitelogénesis se lo define como 
el proceso de rápido crecimiento de oocitos dándose de esta manera el 
aprovechamiento y empaquetamiento de sustancias hepáticas de la hembra 
dentro de sus ovas, de esta manera las reservas de nutrientes maternos son 
críticos para la calidad de las ovas y a posterior el desarrollo embrionario 
(Dabrowski & Blom, 1994). 
 Soliman et al., (1986) señala que en el proceso de ovogénesis la demanda 
de nutrientes específicos así como también de ácido ascórbico (vitamina C) se 
ven aumentadas, en donde una deficiencia de estos provocara daños a nivel 
bioquímico y morfológico tanto en ovas como en los embriones. Además en un 
estudio realizado por el mismo autor, señala que hembras de Oreochromis 
niloticus suplementadas con vitamina C presentaron altos niveles de ácido 
ascórbico tanto en ovas como en alevines obtenidos. Halver et al (1975) 
mediante autorradiografía demostró que el ácido ascórbico es absorbido a través 
del ovario y este se fija en las membranas que recubren a las ovas de 
34 
 
Oncorhynchus mykiss. De esta manera las mejoras respecto a parámetros como 
la tasa de fecundidad y la calidad de la ova (color, tamaño, etc.) se la atribuye a 
la formación de radicales de oxígeno durante la biosíntesis de hormonas 
esteroidales (Izquierdo & Fernández-Palacios, 2004). 
Para machos reproductores el ácido ascórbico ha demostrado una mejora en 
las células espermáticas durante el proceso de espermiogénesis, una vez 
producidos los gametos sexuales (espermatozoides) se puede observar que su 
calidad (motilidad y concentración) mejora (Carrillo, 2016). Incluso en el proceso 
de fertilización puede ser muy beneficioso, todo esto se atribuye a que el ácido 
ascórbico posee una función antioxidante, que impide la per-oxidación de los 
componentes lipídicos lo cual favorece a la calidad del espermatozoide 
(Izquierdo & Fernández-Palacios, 2004).  
Respecto a los perfiles hematológicos, se conoce que el ácido ascórbico al 
contribuir en el funcionamiento del sistema inmunológico ayuda a la síntesis  y 
con ello el aumento en la cantidad de glóbulos rojos (Cuaical et al., 2013). 
Chagas & Val (2003) señalan que la suplementación de alimentos con ácido 
ascórbico es proporcional a los valores de hematocrito relacionando así los 
valores bajos con enfermedades como la anemia. Los niveles de glucosa 
también se pueden ver disminuidos al utilizar diferentes cantidades de ácido 
ascórbico esto debido a que se disminuye el impacto del estrés evitando así la 
disminución de las reservas de glucógeno y que esté a su vez produzca la 
liberación de glucosa en la sangre (Por et al., 2021). 
Vitamina E (alfa tocoferol).  Conocidos también como tocoferoles y tocotrienoles, 
son compuestos liposolubles con una cadena lateral del tipo isoprenoide (Duran & Borja, 
1993). Se conoce que la Vitamina E no puede ser sintetizada por lo que generalmente se 
35 
 
administra de forma alfa-tocoferol, este a subes solo es absorbido en el lumen del 
intestino y la mucosa entre un 20 a 50% (Izquierdo & Fernández-Palacios, 2004).  
La vitamina E es adicionada en alimentos balanceados por sus 
características antioxidantes, además de su efecto reductor del estrés (Espinosa 
de los Monteros & Labarta, 1997). La adición de vitamina E en dietas afecta 
positivamente a la síntesis de astaxantinas en el músculo, el cual en las hembras 
en etapas de reproducción son movilizadas al ovario y con ello a los óvulos 
(Eguia, 2017).  
La vitamina E se moviliza a los ovarios mediante lipoproteínas, cargando 
favorablemente de lípidos al óvulo, de esta manera ayuda a evitar la 
degeneración peroxidativa de las grasas en los óvulos. Dando así una mejora en 
la calidad de gametos (ovas) (Rodríguez & Rojas, 2014). El metabolismo de la 
vitamina E se ve mediada por lipoproteínas que transportan este elemento en 
pequeñas grupos, este se da generalmente de manera exógena y endógena 
(Palace & Werner, 2006). El metabolismo endógeno se encarga de transportar 
lípidos desde el intestino al el hígado en forma de ácidos grasos unidos a 
proteínas transportadoras (Brown & Challem, 2007).  
El metabolismo exógeno por otro lado exporta estos lípidos desde el hígado a 
los tejidos periféricos los cuales se transportan en pequeños paquetes de 
lipoproteínas de baja y alta densidad, estos últimos son conocidos como los 
principales precursores del proceso de vitelogénesis y la formación de lípidos en 
ovas (Palace & Werner, 2006). Es necesario recalcar que el contenido de 
vitamina E se encuentran en grandes cantidades en las ovas depositadas por 
salmónidos, y bajo tejidos de reproductores alimentados con dietas ricas en 
vitamina E después del periodo de puesta (Clerton et al., 2001).  
36 
 
Respecto a la reproducción del macho, la vitamina E tiene un rol 
fundamental, se caracteriza por dar una protección de las células del esperma 
durante la etapa de espermatogénesis y hasta el momento de la fecundación, 
reduciendo el riesgo de peroxidación de los lípidos causando así una baja   
mortalidad del esperma (Clerton et al., 2001),  su déficit causa degeneraciones 
en los embriones, bajas tasas de eclosión e incluso pueden llegar a afectar a la 
expulsión de células germinativas epiteliales de los testículos (Carrillo, 2009). 
Las bajas cantidades de vitamina E pueden causar también una posible 
esterilidad y un descenso en la producción de prostaglandinas (Schowen, 1993).  
Lee & Dabrowski (2004) dan como resultado en estudios de Perca flavescens 
con dietas deficientes en vitamina E niveles extremadamente bajos de tocoferol 
en el plasma espermático perjudicando así la viabilidad del esperma.  
En lo que respecta a parámetros hematológicos García et al (2007) señalan 
que la inclusión de vitamina E en dietas de Oncorhynchus mykiss  influencia 
positivamente en los valores de hematocrito, y la cantidad de glóbulos rojos así 
como también disminuye la cantidad de cortisol debido a su capacidad 
antioxidante. Respecto a las cantidades de albúmina, índices altos pueden 
indicar un daño hepático respecto a la suplementación de dietas, sin embargo en 
estudios realizados en ratas se pudo apreciar que la adición de vitamina E 
mantiene estables y con ello también mejora los niveles de albúmina 
(Fernández, 2008) 
La suplementación en alimentos relacionada al bienestar animal 
El sistema inmunológico en los vertebrados cumple funciones de protección 
ante infecciones producidas por agentes externos, los cuales pueden causar 
graves alteraciones en las funciones vitales del individuo, incluso pudiendo llevar 
al mismo a la muerte (Penagos et al., 2009).  Hoy en día la suplementación en la 
37 
 
alimentación de peces con diversos materiales como vitaminas, nucleótidos, 
probióticos, micro minerales e inmuno-estimulantes  se ha convertido en algo 
esencial para el crecimiento normal y mantener un estado de salud óptimo de los 
animales en un criadero (Macas & Molina, 2015). 
Respecto a la suplementación con nucleótidos, específicamente en 
salmónidos, permite generar resistencia a infecciones virales, bacterianas y 
parasitarias, con ello también mejorar la capacidad de la osmorregulación 
(González, 2005). Se conoce también que los nucleótidos adicionados en el 
alimento balanceado, son identificados y procesados en el tracto digestivo del 
animal, pasando así al torrente sanguíneo y distribuyéndose hacia ganglios 
linfáticos y células. Estos compuestos pueden intervenir en las diversas 
funciones bioquímicas esenciales, dando una señal para la respuesta inmune y 
mejorando la resistencia de los peces, al ser atacados por agentes patógenos 
(Siegel, 2011). 
Otros de los elementos de suplementación son las vitaminas, la vitamina C o 
ácido ascórbico ayuda a evitar en el desarrollo de peces enfermedades como 
escoliosis, la lordosis, hemorragias internas, etc .Por otro lado la vitamina E en 
truchas precisamente incrementa la mortalidad, y reduce también los niveles de 
hematocrito (Car, 2018). 
Se ha demostrado que la vitamina C en altas concentraciones presenta 
efectos positivos en el sistema inmunológico mejorando la resistencia frente a 
cuadros de estrés y enfermedades (Ai et al., 2006). La vitamina E en truchas 
precisamente incrementa la mortalidad, y reduce también los niveles de 
hematocrito (Poston et al., 1976). Ambos al ser componentes antioxidantes 
ayudan a contrarrestar el efecto del estrés, incidiendo así en niveles de glucosa 
en la sangre, esto debido a que el efecto del estrés aumenta la excreción del 
38 
 
cortisol, esté a su vez aumenta la glucogénesis movilizando el metabolismo de la 
glucosa, resultando así niveles elevados de glucosa circulante en la sangre 
(Mommsen et al., 1999) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
39 
 
Capítulo III 
Metodología 
Ubicación del lugar de investigación  
 
Ubicación y descripción del área de estudio  
El estudio se realizó en las instalaciones de la Carrera de Ingeniería 
Agropecuaria IASA-1, ubicada en el cantón Rumiñahui en la provincia de Pichincha, 
Ecuador. Se localiza en las coordenadas  UTM WGS 84 ZONA 17 SUR M 
787833.19 m E, 99957478.26 m S, la zona corresponde a un clima templado-
húmedo (Cevallos & Tufiño, 2019), tiene una precipitación anual de 1200 mm, una 
temperatura de 16°C, humedad relativa de 65% y  una altitud de 2932 m.s.n.m 
(Terán, 2006)  
Establecimiento del proyecto 
Los reproductores de trucha arco iris (Onconrhybchus mykiss) fueron 
seleccionados del proyecto de producción acuícola Pailones-IASA 1. Para la 
experimentación se utilizó un total de 36 animales, 12 machos (de 600 a 800 g) y 24 
hembras (estado de vitelogénesis o maduración estado III) distribuidos en 24 
unidades experimentales (1 m x 2 m x 2 m), en donde se colocaron los 
reproductores de acuerdo al sexo en una relación de 2:1 (2 hembras y 1 macho).  
Una vez seleccionado los reproductores fueron  identificados mediante la 
marcación digital (chips “D.A.T.A.M.A.R.S”) y fueron alimentados durante 90 días 
con cuatro tipos de dietas: Machos-dieta balanceada comercial (T1), Hembras-dieta 
balanceada comercial (T2), Machos-dieta balanceada comercial más 4 g   de 
nucleótidos (T3), Hembras-dieta balanceada comercial más 4 g   de nucleótidos (T4), 
Machos-dieta balanceada comercial más 2400 UI de vitamina C y 900 UI vitamina E 
(T5), Hembras-dieta balanceada comercial más 2400 UI de vitamina C y 900 UI 
40 
 
vitamina E (T6), Machos-dieta balanceada comercial más 4 g de Nucleótidos, 2400 
UI de vitamina C y 900 UI de vitamina E (T7) y Hembras-dieta balanceada comercial 
más 4 g de Nucleótidos, 2400 UI de vitamina C y 900 UI de vitamina E (T8) 
(Guzmán, 2013; Barrera  & Barros, 2018).  
Para la inclusión de nucleótidos y/o vitaminas a la dieta balanceada comercial 
se utilizó una solución de gelatina sin sabor con agua a proporción 1:100, la cual se 
mezcló con el alimento. 
El proyecto se realizó mediante un diseño  completamente al azar con tres 
repeticiones en parcela dividida 4x2  bajo el siguiente modelo matemático: 
Yijk = u + Si+ ek(i) +Dj + (SD)ij + eijk  
Donde: 
u: Media poblacional 
Si:  Efecto principal del sexo  
ek(i):Error de la dieta  
Dj: Efecto principal de la dieta 
(SD)ij: Interacción de la dieta-sexo  
eijk: error del sexo  
La disposición del experimento se puede apreciar en la Figura 2. 
Figura 2 
Croquis experimental 
Bloque 1
Bloque 2
Bloque 3
HembrasMachos Hembras
Machos Hembras
Machos HembrasMachos HembraHembrasMachos
Machos Hembras
Balancado mas Vitaminas Balan+Vit+Nucle
Machos Hembra
Machos HembraMachos Hembra
Machos Hembra
Control
Control
Control
Balan+Vit+Nucle Balancado mas Vitaminas Balanceado mas  nucleotidos
Balan+Vit+Nucle
Machos
Balanceado mas  nucleotidos
Machos Hembra
Balancado mas Vitaminas
Balanceado mas  nucleotidos
41 
 
Variables a evaluar  
Reproductivas 
Machos. De cada unidad experimental se tomó un macho al cual mediante la 
técnica unipersonal se extrajo los gametos masculinos (semen), para evaluar 
variables reproductivas como: Concentración espermática, mortalidad 
espermática, movilidad y tiempo de activación. Estas mediciones se realizarán 
cada 25 días.  
La concentración espermática se evalúo mediante el conteo del número de 
células espermáticas por unidad de volumen, su determinación se realizó 2 
horas después de la recolección del semen, se preparó una dilución 1:50 (20 μL 
de semen y 980 de diluyente (sacarosa 0.6 molar y 10% DMSO)). Se utilizó 10 
μL de solución de semen en una cámara de Neubauer bajo un lente de 40x 
(Chicaiza, 2015).  
La Mortalidad espermática se evalúo mediante la técnica de tinción de 
Eosina-Nigrosina, donde se tomó 10 µL de semen, se mezcló en igual cantidad 
con la solución E-N y mediante frotis se examinó a 100x (Bravo, 2018)  
Respecto a la movilidad esta fue medida en masa, para lo cual se preparó 
una solución salina (Cloruro de sodio al 0.8%) de esta manera se buscó activar a 
los espermatozoides. Esta dilución se observó y evaluó mediante un lente de 40x 
(Chicaiza, 2015).  
Por último el tiempo de activación fue medido mediante un cronómetro, esta 
fue evaluada durante el tiempo de movimiento del espermatozoide desde su 
activación (mediante solución salina) hasta la pérdida de movimiento 
Hembras. De cada unidad experimenta se evaluó dos hembras de las cuales 
se extrajeron los gametos sexuales (ovas) mediante la técnica unipersonal, de 
42 
 
esta manera se evaluó variables reproductivas como: Color de la ova, diámetro 
de la ova, peso de la ova, fecundidad absoluta y fecundidad relativa. Se realizó 
chequeos cada 15 días hasta la obtención de gametos sexuales (ovas). 
Para evaluar el color de la ova, se utilizó el software ImageJ el cual con la 
función histograma permitió evaluar la intensidad, color rojo, color verde, color 
azul y R+G+B con muestras de 10 ovas al azar de cada hembra. 
Respecto al diámetro de la ova se tomaron muestras al azar de cada hembra, 
los cuales fueron analizados mediante el programa de procesamiento de imagen 
digital ImageJ y su contador de píxeles. 
Para el peso de la ova se tomó una muestra representativa al azar de cada 
hembra, los cuales fueron pesados mediante una balanza analítica en el 
laboratorio de acuacultura de la ESPE-IASA 1 
Finalmente para el cálculo de la fecundidad absoluta se relacionó la cantidad 
de óvulos frente al peso individual del reproductor, mientras que la fecundidad 
relativa fue en función a una porción de ovas obtenidas frente al peso individual 
del reproductor. 
Hematológicas 
Las variables a evaluar fueron número de Eritrocitos, hematocrito, albúmina, 
glucosa, proteína total y cortisol. Se realizó la extracción de sangre de la vena 
caudal de los peces mediante una jeringa de 3 ml. La jeringa debe estar 
previamente heparinizada, con 5000 UI/mL de heparina sódica. Una vez extraída 
la sangre se colocó en tubos vacutainer con su respectiva rotulación y 
almacenadas a 4°C. Las muestras de sangre se tomaron cada 15 días.   
43 
 
       El recuento de eritrocitos se realizó con la ayuda de microscopio óptico y 
cámara de Neubauer  marca Numak (Maya, 2007). Para determinar el número 
de eritrocitos en sangre se utilizó la siguiente fórmula 
Número de eritrocitos en sangre =  
células x 106µL  
El análisis de Hematocrito se realizó mediante un capilar, este se colocó en 
una centrífuga MX 8624 a 3500 rpm durante 10 minutos y se analizó mediante 
una tabla de micro hematocrito, evaluando así a cada uno de los reproductores 
(Maya, 2007).    
Para el análisis de proteína total, albúmina y hemoglobina se utilizó el método 
fotométrico colorimétrico, el cual fue medido con espectrofotómetro UV (Min & 
Kang, 2008).  
Finalmente el análisis de cortisol se utilizó las muestras sanguíneas, las 
cuales fueron centrifugadas por 10 minutos a 3000 rpm para poder extraer el 
plasma sanguíneo (Zevallos De La Torre, 2018). La determinación de cortisol en 
plasma sanguíneo se realizó mediante el kit de ELISA (Flores, 2018).  
Los parámetros físico-químicos del agua se registró diariamente los 
parámetros de agua durante todos los días a partir de las 9:00 am, 12:00, 14:00 
y 18:00 para los siguientes parámetros: temperatura, pH. Oxígeno disuelto, 
sólidos suspendidos. Para análisis de bases nitrogenadas estos análisis se 
realizaron cada semana (NH3, NO2 y NO3). 
44 
 
Análisis de la información. 
Las variables morfológicas, reproductivas y hematológicas se caracterizaron 
con estadística descriptiva (media y desviación estándar). Para comparar las 
variables morfológicas, reproductivas y hematológicas entre tratamientos se 
realizó análisis de varianza y pruebas de Tukey (𝛼 = 0.05). Todos los análisis se 
realizaron en el software INFOSTAT.  
 
 
 
 
 
45 
 
Capítulo IV 
Resultados y Discusión 
Resultados  
Variables reproductivas Macho 
Volumen Seminal. Al realizar el análisis de varianza para el volumen 
seminal en Trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss)  mostró un efecto significativo 
(F=37.00; p=0.0003) para la interacción dieta* volumen, teniendo así al tratamiento 
dieta comercial más vitaminas con la mayor cantidad de líquido seminal (1,50 ± 0,03 
ml) en comparación al tratamiento control (dieta comercial) que presentó la menor 
cantidad de líquido seminal (1,13 ± 0,03 ml) (tabla 1). 
Tabla 1 Promedio ± error estándar de mortalidad de espermatozoides evaluados en Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) 
Promedio ± error estándar del volumen seminal evaluado en Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Tratamiento n Volumen seminal (mL) Peso promedio ( kg) 
Vitaminas  3 1,50 ± 0,03  a 1,27 ± 0,02  a 
Vit + Nucleótidos 3 1,43 ± 0,03  a 1,10 ± 0,02  b 
Nucleótidos 3 1,27 ± 0,03  b 1,06 ± 0,02  b 
Control 3 1,13 ± 0,03  c 1,01 ± 0,02  b 
46 
 
Figura 3 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el volumen seminal en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el volumen seminal en 
machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Tiempo de activación.  El análisis de varianza para el tiempo de activación 
de espermatozoides de Trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss)  mostró un efecto 
significativo para la interacción dieta* tiempo de activación (F=28.18; p=0.0001), en 
donde la dieta comercial más vitaminas presenta el mayor tiempo de activación de 
espermatozoides (167,33 ± 3,10 segundos) en comparación al tratamiento control 
(dieta comercial) que presentó el menor tiempo de activación de espermatozoides 
(84,67 ± 3,10 segundos) (tabla 2). 
Tabla 2 Promedio ± error estándar del tiempo de actividad espermática evaluada en Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Promedio ± error estándar del tiempo de actividad espermática evaluada en Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Tratamiento n Tiempo de activación (segundos) 
Vitaminas  3 167,33 ± 3,10  a 
Vit + Nucleótidos 3 119,67 ± 3,10  b 
Nucleótidos 3 103,67 ± 3,10  c 
Control 3 84,67 ± 3,10  d 
47 
 
Figura 4 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el tiempo de activación  de espermatozoides en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el tiempo de activación                    
de espermatozoides en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Concentración espermática. El análisis de varianza para los resultados 
obtenidos en las variables de concentración espermática  mostró un efecto 
significativo para la interacción dieta* concentración (F=164.49; p<0.0001),  muestra 
diferencias significativas entre tratamientos evaluados, en donde la dieta comercial 
más vitaminas presentan mayor cantidad de células por mililitro (15,6 ± 0,12 x 106) 
en comparación al a la dieta comercial (control)  que presentó la menor cantidad de 
células por mililitro (12,2 ± 0,12 x 106) (tabla 3). 
 
 
 
 
 
48 
 
Tabla 3 Promedio ± error estándar de la concentración de espermatozoides evaluados en Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Promedio ± error estándar de la concentración de espermatozoides evaluados en 
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Figura 5 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre concentración de espermatozoides en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre concentración de 
espermatozoides en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
 
Tratamiento  n Concentración espermática (Cel/mL)  
Vitaminas  3 15,6 ± 0,12 x 106  a 
Vit + Nucleótidos 3 14,57 ± 0,12 x 106  b 
Nucleótidos 3 13,27 ± 0,12 x 106  c 
Control 3 12,2 ± 0,12 x 106  d 
49 
 
Movilidad. La movilidad espermática fue categorizada como móviles, semi-
móviles e inmóviles, en donde el análisis de varianza obtenido mostró un efecto 
significativo para la interacción dieta* movilidad (F=3.81; p=0.0121), donde muestra 
diferencias significativas entre los tratamientos evaluados. En el análisis realizado la 
dieta más vitaminas presenta el mayor porcentaje de espermatozoides móviles 
(34,66 ± 2,62) y semi-móviles (32,91 ± 3,59) en comparación a la dieta comercial 
que presenta la menor cantidad de espermatozoides móviles (14,89 ± 1,97) y semi-
móviles (15,65 ± 1,70). Respecto a los espermatozoides inmóviles la dieta comercial 
presenta la mayor cantidad de espermatozoides (26,73 ± 0,89  a) a diferencia de la 
dieta comercial más vitaminas (22,87 ± 0,40) que presentan la menor cantidad de 
ellos (Tabla 4).   
Tabla 4 Promedio ± error estándar de la movilidad en espermatozoides evaluados en Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Promedio ± error estándar del porcentaje de movilidad en espermatozoides 
evaluados en Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
Tratamiento n Móviles (%) Semi-móviles (%) Inmóviles (%)  
Vitaminas  3 34,66 ± 2,62  a 32,91 ± 3,59  a 22,87 ± 0,40  a 
Vit + Nucleótidos 3 28,16 ± 0,80  b 31,30 ± 0,18  b 26,73 ± 0,88  a 
Nucleótidos 3 22,29 ± 1,32  ab 20,14 ± 2,15  c 23,84 ± 0,75  a 
Control 3 14,89 ± 1,97  c 15,65 ± 1,70  c 26,73 ± 0,89  a 
50 
 
Figura 6 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la movilidad de espermatozoides en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la movilidad de 
espermatozoides en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Mortalidad espermática. El análisis de varianza para la mortalidad 
espermática en Trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss) mostró un efecto 
significativo para la interacción dieta*mortalidad (F=4.84; p=0.0483), en donde la 
mayor cantidad de espermatozoides muertos se presentó en el tratamiento control 
(dieta comercial), en comparación al tratamiento dieta comercial más vitaminas que 
presentó la menor cantidad de espermatozoides muertos y con ello la mayor 
cantidad de espermatozoides vivos (tabla 5) 
 
51 
 
Tabla 5 Promedio ± error estándar de mortalidad de espermatozoides evaluados en Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) 
Promedio ± error estándar de mortalidad de espermatozoides evaluados en Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Figura 7 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la mortalidad espermática en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
  
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la mortalidad espermática 
en machos de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Tratamiento n 
Espermatozoides 
vivos 
Espermatozoides 
muertos  
Vitaminas  3 168,67 ± 4,26  a 31,33 ± 4,26  b 
Vit + Nucleótidos 3 157,67 ± 4,26  ab 42,33 ± 4,26  ab 
Nucleótidos 3 152,33 ± 4,26  ab 47,67 ± 4,26  ab 
Control 3 146,67 ± 4,26  b 53,33 ± 4,26  a 
52 
 
Variables reproductivas hembra  
 
Tamaño de ova. El análisis de varianza para el tamaño de ova en Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss) mostró un efecto significativo para la interacción 
tratamiento*tamaño de ova (F=16.49; p<0.0001), en donde la dieta comercial más 
vitaminas presentó el mayor tamaño de ova (6,5 ± 0,01 mm) mientras que la dieta 
comercial (tratamiento control) mostró el menor tamaño de ova (4,4  ± 0,01 mm). 
(Tabla 6) 
Tabla 6 Promedio ± error estándar del tamaño de ovas de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Promedio ± error estándar del tamaño de ovas de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Figura 8 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el tamaño de ova  en hembras de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el tamaño de ova  en 
hembras de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss)  
 
Tratamiento n Tamaño (mm) 
Vitaminas  40 6,5 ± 0,01  a 
Vit + Nucleótidos 40 5,9 ± 0,01  b 
Nucleótidos 40 5,0 ± 0,01  c 
Control 40 4,4 ± 0,01  d 
53 
 
Color de ova. El análisis de varianza para el color de ova determinó que 
existe una diferencia significativa entre cada uno de los tratamientos. Respecto a la 
Intensidad, color rojo, color verde, color azul y R+G+B el alimento comercial más 
vitaminas presentó mejores resultados (161,63 ± 0,46, 165,13 ± 0,82, 166,05 ± 0,67, 
123,03 ± 0,71  y 165,88 ± 0,68 respectivamente); mientras que la dieta comercial 
(tratamiento control) presentó los menores resultados (124,68 ± 0,46, 128,53 ± 0,82, 
124,28 ± 0,67, 83,38 ± 0,71, 119,98 ± 0,68  respectivamente). (Tabla 7.) 
Tabla 7 Promedio ± error estándar de la intensidad, color rojo, color verde, color azul y R+G+B,  observada en ovas de Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) 
Promedio ± error estándar de la colorimetría observada en ovas de Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Figura 9 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre colorimetría de ova  en hembras de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre colorimetría de ova  en 
hembras de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Tratamiento Intensidad (bits) Rojo (bits) Verde (bits) Azul (bits) R+G+B (bits) 
Vitaminas  
161,63 ± 0,46  a 
165,13 ± 0,82  a 166,05 ± 0,67  a 123,03 ± 0,71  a 165,88 ± 0,68  a 
Vit + Nucleótidos 
155,95 ± 0,46  b 
159,10 ± 0,82  b 158,58 ± 0,67  b 114,90 ± 0,71  b 161,55 ± 0,68  b 
Nucleótidos 
135,85 ± 0,46  c 
139,00 ± 0,82  c 136,45 ± 0,67  c 94,03 ± 0,71  c 137,38 ± 0,68  c 
Control 
124,68 ± 0,46  d 128,53 ± 0,82  d 124,28 ± 0,67  d 83,38 ± 0,71  d 119,98 ± 0,68  d 
54 
 
Peso de ovas. El análisis de varianza para el peso de ova mostró un efecto 
significativo para la interacción tratamiento*peso de ova (F=152; p=0.0009), y  para 
tratamiento*peso de ova (muestra) (F=12.12; p=0.0349), en donde la dieta comercial 
más vitaminas presentó el mayor peso de ova (95.00 ± 2.83) y mayor peso de ova 
(muestra) (1.43 ± 0.03) mientras que la dieta comercial (tratamiento control) mostró 
el menor peso de ova (62.00 ± 1.41) y menor peso de ova (muestra) (1.22 ± 0,05) 
Tabla 8 Promedio ± error estándar del peso de ovas observada de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Promedio ± error estándar del peso de ovas observada de Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Figura 10 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre peso total de ova en  reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre peso total de ova en  
reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Tratamiento n 
Peso de ova 
(muestra) g 
Peso de ova (total) g 
 
Vitaminas  2 1.43 ± 0,03  a 95,00 ± 2,83  a  
Vit + Nucleótidos 2 1.34 ± 0,03  ab 84,00 ± 1,41  ab  
Nucleótidos 2 1.28 ± 0,01  ab 95,00 ± 1,41  a  
Control 2 1.22 ± 0,05  b 62,00 ± 1.,41  c  
55 
 
Figura 11 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre peso de 20 ovas en  reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre peso de 20 ovas en  
reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Fecundidad. El análisis de varianza para la fecundidad en Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) mostró un efecto significativo para la interacción 
tratamiento*fecundidad absoluta (F=52.75; p=0.0042), mas no para la interacción 
tratamiento*fecundidad relativa (F=6.57; p=0.0782), en donde la dieta comercial más 
vitaminas presentó mayor fecundidad absoluta (6795 ± 238,00) y mayor fecundidad 
relativa (4605 ± 117,38) mientras que la dieta comercial (tratamiento control) mostró 
el menor fecundidad absoluta (3768,5 ± 169,50) y menor fecundidad relativa (3626 ± 
65,05) (Tabla 9). 
 
 
 
 
 
 
 
56 
 
Tabla 9 Promedio ± error estándar de la fecundidad absoluta y fecundidad relativa de hembras de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Promedio ± error estándar de la fecundidad absoluta y fecundidad relativa de 
hembras de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
n= Medias con una letra común no son significativamente diferentes (p > 0.05) 
Figura 12 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la fecundidad absoluta  en  hembras reproductoras de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la fecundidad absoluta      
en  hembras reproductoras de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
Tratamiento n 
 Fecundidad absoluta  
Ovocitos/kg ♀ 
Fecundidad relativa 
Ovocitos/kg ♀ 
Vitaminas  2  6795 ± 238,00  a 4605 ± 117,38  a 
Nucleótidos 2  6080,5 ± 111,50  a 5190 ± 236  a 
Vit + Nucleótidos 2  5629 ± 151,00  a 4437,50 ± 379,50  a 
Control 2  3768,5 ± 169,50  b 3626 ± 65,05  a 
57 
 
Figura 13 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la fecundidad relativa en  hembras reproductoras de  Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la fecundidad relativa en  
hembras reproductoras de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Variables hematológicas 
 
Glucosa.  Al realizar el análisis ANOVA se determinó que existe un efecto 
significativo respecto a la aplicación de suplementos (dietas) (F=103.41; p<0.0001), 
donde las dietas comerciales más vitaminas presentan la mayor cantidad de glucosa 
en sangre (144,5 ± 2,52) respecto a las dietas comerciales (control) (84,24 ± 2,52) 
(Tabla 10). 
 
 
 
 
 
 
58 
 
Tabla 10 Promedio ± error estándar de glucosa en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Promedio ± error estándar de glucosa en sangre de reproductores de Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tratamiento n Glucosa (mg/dL) 
Vitaminas 9 144,5 ± 2,52  a 
Nucleótidos 9 120,41 ± 2,52  b 
Vit+Nucleótidos 9 103,11 ± 2,52  c 
Control 9 84,24 ± 2,52  d 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Figura 14 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de 
reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Al realizar el análisis anova se encuentra un efecto positivo del tiempo 
(F=215.09; p<0.0001). Donde la mayor cantidad de glucosa en sangre se presenta a 
los noventa días de evaluación (181,71 ± 2,56) respecto a los cero días de 
evaluación (65,16 ± 2,56) (Tabla 11). 
 
 
59 
 
Tabla 11 Promedio ± error estándar de glucosa en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Promedio ± error estándar de glucosa en sangre de reproductores de Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tiempo n Glucosa (mg/dL) 
0 36 65,16 ± 2,56  f 
15 36 82,06 ± 2,56  e 
30 36 107,26 ± 2,56  d 
45 36 104,43 ± 2,56  d 
60 36 132,31 ± 2,56  b 
75 36 118,53 ± 2,56  c 
90 36 181,71 ± 2,56  a 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Figura 15 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de 
reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
60 
 
Por otro lado al realizar el análisis ANOVA se encuentra un efecto positivo 
para la interacción dieta*tiempo (F=6.50; p<0.0001). Donde al realizar una prueba de 
comparación de Tukey, se determinó que existe una diferencia significativa para 
cada tratamiento, en donde el tratamiento dieta comercial más vitaminas a los 
noventa días de evaluación presentó la mayor cantidad de glucosa en sangre 
(231,45 ± 4,08) respecto al tratamiento dieta comercial (control) a los 15 días de 
evaluación (35,15 ± 2,04) (Tabla 12). 
Tabla 12 Promedio ± error estándar de glucosa en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Promedio ± error estándar de glucosa en sangre de reproductores de Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tiempo (días) Dieta  Glucosa (mg/dL) 
0 
Vitaminas 71,11 ± 2,30  l 
Nucleótidos 75,82 ± 3,34  ijkl 
Vit+Nucleótidos 73,95 ± 4,83  jkl 
Control 39,74 ± 4,82  m 
15 
Vitaminas 120,95 ± 3,19  efg 
Nucleótidos 99,54 ± 4,36  fghi 
Vit+Nucleótidos 72,59 ± 4,76  kl 
Control 35,15 ± 2,04  m 
30 
Vitaminas 122,5 ± 1,65  ef 
Nucleótidos 113,99 ± 1,18  efgh 
Vit+Nucleótidos 97,95 ± 0,80  fghijk 
Control 94,61 ± 0,83  hijkl 
45 
Vitaminas 130,49 ± 3,41  de 
Nucleótidos 114,01 ± 3,33  efgh 
Vit+Nucleótidos 98,59 ± 5,71  fghij 
Control 74,62 ± 0,88  ijkl 
60 
Vitaminas 177,42 ± 4,89  b 
Nucleótidos 139,4 ± 7,14  cde 
Vit+Nucleótidos 116,55 ± 3,93  efgh 
Control 95,89 ± 1,85  ghijkl 
75 
Vitaminas 157,57 ± 8,35  bc 
Nucleótidos 120,61 ± 5,46  efg 
Vit+Nucleótidos 101,62 ± 2,02  fgh 
Control 94,32 ± 1,94  hijkl 
90 
Vitaminas 231,45 ± 4,08  a 
Nucleótidos 179,54 ± 9,67  b 
Vit+Nucleótidos 160,5 ± 7,69  bc 
Control 155,37 ± 9,22  bcd 
61 
 
Figura 16  Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de 
reproductores de  Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
Figura 17 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre glucosa en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
62 
 
Proteína.  Al realizar el análisis ANOVA se determinó que  existe un efecto 
significativo respecto a la aplicación de suplementos (dietas) (F=94.00; p<0.0001), 
donde las dietas comerciales más nucleótidos presentan la mayor cantidad de 
proteína en sangre (44,46 ± 0,63) respecto a las dietas comerciales (control) (29,82 
± 0,63)(Tabla 13). 
Tabla 13 Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tratamiento n Proteína (mg/dL) 
Nucleótidos 9 44,46 ± 0,63  a 
Vitaminas 9 39,67 ± 0,63  b 
Vit+Nucleótidos 9 37,43 ± 0,63  b 
Control 9 29,82 ± 0,63  c 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Figura 18 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss)  
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
63 
 
Al realizar el análisis ANOVA se encuentra un efecto positivo del tiempo 
(F=98.04; p<0.0001). Donde la mayor cantidad de proteína en sangre se presenta a 
los noventa días de evaluación (53,79 ± 0,98) respecto a los cero días de evaluación 
(27,83 ± 0,98) (Tabla 14). 
Tabla 14 Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tiempo n Proteína (mg/dL) 
0 36 29,97 ± 0,98  de 
15 36 27,83 ± 0,98  e 
30 36 31,97 ± 0,98  d 
45 36 33,60 ± 0,98  d 
60 36 40,66 ± 0,98  c 
75 36 47,11 ± 0,98  b 
90 36 53,79 ± 0,98  a 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Figura 19 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
 
64 
 
Por otro lado al realizar el análisis ANOVA se encuentra un efecto positivo 
para la interacción dieta*tiempo (F=6.31; p<0.0001). Donde al realizar una prueba de 
comparación de Tukey se determinó que existe diferencia significativa entre cada 
unos de los tratamientos, donde a los noventa días de evaluación la dieta comercial 
más vitaminas y nucleótidos presentan la mayor cantidad de proteína en sangre 
(66,23 ± 1,69) a comparación del tratamiento dieta comercial a los quince días de 
evaluación (23,82 ± 0,81) (Tabla 15). 
Tabla 15 Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tiempo (días) Dieta  Proteína (mg/dL) 
0 
Vitaminas  31,77 ± 0,5  hijkl 
Nucleótidos 34,51 ± 0,66  ghij 
Vit+Nucleótidos 28,91 ± 0,19  hijkl 
Control 24,67 ± 0,59  kl 
15 
Vitaminas  28,46 ± 0,45  ijkl 
Nucleótidos 32,9 ± 0,41  hijkl 
Vit+Nucleótidos 26,13 ± 1,23  jkl 
Control 23,82 ± 0,81  l 
30 
Vitaminas  34,58 ± 0,55  ghij 
Nucleótidos 34,36 ± 1,19  ghijk 
Vit+Nucleótidos 30,99 ± 0,76  hijkl 
Control 27,94 ± 0,84  ijkl 
45 
Vitaminas  34,79 ± 1,25  ghij 
Nucleótidos 43,59 ± 1,88  defg 
Vit+Nucleótidos 30,08 ± 0,90  hijkl 
Control 25,94 ± 0,59  jkl 
60 
Vitaminas  46,77 ± 2,16  de 
Nucleótidos 46,41 ± 2,09  def 
Vit+Nucleótidos 37,02 ± 1,18  fghi 
Control 32,43 ± 1,76  hijkl 
75 
Vitaminas  49,67 ± 1,34  cd 
Nucleótidos 60,72 ± 1,64  ab 
Vit+Nucleótidos 42,64 ± 1,20  defg 
Control 35,43 ± 1,05  ghij 
90 
Vitaminas  51,68 ± 5,27  bcd 
Nucleótidos 58,72 ± 3,08  abc 
Vit+Nucleótidos 66,23 ± 1,69  a 
Control 38,52 ± 4,22  efgh 
 
65 
 
Figura 20 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Figura 21 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Al realizar el análisis ANOVA se encuentra un efecto positivo de la 
interacción dieta*sexo  (F=4.41; p=0.0415). Donde la mayor cantidad de proteína en 
sangre se presenta en machos (38,21 ± 0,43) respecto a las hembras (37,48 ± 0,31) 
(Tabla 16). 
66 
 
Tabla 16 Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Promedio ± error estándar de proteína en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Sexo n Proteína (mg/dL) 
Macho 12 38,21 ± 0,43  a 
Hembra 24 37,48 ± 0,31  a 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común       
no son significativamente diferentes (p > 0.05). 
 
Figura 22 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre proteína en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Albumina. Al realizar el análisis ANOVA se determinó que existe un efecto 
significativo respecto a la aplicación de suplementos (dietas) (F=40.12; p=0.0002), 
donde las dietas comerciales más vitaminas presentan la mayor cantidad de 
albúmina en sangre (23.67 ± 0,48) respecto a las dietas comerciales (control) (16.96 
± 0,0.48) (Tabla 17). 
67 
 
Tabla 17 Promedio ± error estándar de albúmina en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Promedio ± error estándar de albúmina en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tratamiento n Albumina (mg/dL) 
Vitaminas 9 23,67 ± 0,48  a 
Nucleótidos 9 22,57 ± 0,48  a 
Vit+Nucleótidos 9 19,74 ± 0,48  b 
Control 9 16,96 ± 0,48  c 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Figura 23 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Al realizar el análisis ANOVA se encuentra un efecto positivo del tiempo 
(F=79.81; p<0.0001). Donde la mayor cantidad de albúmina en sangre se presenta a 
los cuarenta y cinco días de evaluación (25.00 ± 0.39) respecto a los cero días de 
evaluación (15.96 ± 0,39) (Tabla 18). 
68 
 
Tabla 18 Promedio ± error estándar de albumina en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Promedio ± error estándar de albumina en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tiempo n Albumina (mg/dL) 
0 36 15,96 ± 0,39  d 
15 36 17,74 ± 0,39  c 
30 36 18,73 ± 0,39  c 
45 36 25,00 ± 0,39  a 
60 36 22,12 ± 0,39  b 
75 36 24,34 ± 0,39  a 
90 36 21,61 ± 0,39  b 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05). 
 
Figura 24 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Por otro lado al realizar el análisis ANOVA se encuentra un efecto positivo 
para la interacción dieta*tiempo (F=2.35; p<0.0023). Donde al realizar una prueba de 
comparación de Tukey se determinó que existe una diferencia significativa entre 
cada uno de los tratamientos, donde a los setenta y cinco días de evaluación la dieta 
69 
 
comercial más vitaminas presentan la mayor cantidad de albúmina en sangre (28,53 
± 0,97) a comparación del tratamiento dieta comercial a los cero días de evaluación 
(12,78 ± 0,43) (Tabla 19). 
Tabla 19 Promedio ± error estándar de albúmina en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Promedio ± error estándar de albúmina en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tiempo (días) Dieta  Albumina (mg/dL) 
0 
Vitaminas  15,98 ± 0,57  lmno 
Nucleótidos 18,74 ± 0,89  hijklm 
Vit+Nucleótidos 16,33 ± 0,84  klmno 
Control 12,78 ± 0,43  o 
15 
Vitaminas  20,07 ± 1,13  fghijk 
Nucleótidos 18,83 ± 0,56  hijklm 
Vit+Nucleótidos 17,45 ± 0,70  ijklmn 
Control 14,62 ± 0,54  no 
30 
Vitaminas  21,51 ± 0,52  efgh 
Nucleótidos 20,08 ± 0,47  fghijk 
Vit+Nucleótidos 16,9 ± 0,31  jklmn 
Control 15 ± 0,39  mno 
45 
Vitaminas  28,3 ± 1,31  a 
Nucleótidos 26,87 ± 0,98  abc 
Vit+Nucleótidos 23,89 ± 0,43  bcdef 
Control 20,94 ± 0,62  fghi 
60 
Vitaminas  24,92 ± 0,19  abcde 
Nucleótidos 23,23 ± 0,18  cdefg 
Vit+Nucleótidos 21,41 ± 0,18  efgh 
Control 18,92 ± 0,22  ghijkl 
75 
Vitaminas  28,53 ± 0,97  a 
Nucleótidos 27,23 ± 1,84  ab 
Vit+Nucleótidos 22,02 ± 0,52  efgh 
Control 19,59 ± 0,24  ghijkl 
90 
Vitaminas  26,39 ± 0,72  abcd 
Nucleótidos 23,01 ± 0,68  defg 
Vit+Nucleótidos 20,18 ± 0,49  fghij 
Control 16,88 ± 0,61  jklmn 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
 
 
 
 
 
 
 
70 
 
Figura 25 Co 
mparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
Figura 26 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
71 
 
Al realizar el análisis ANOVA se encuentra un efecto positivo de la 
interacción sexo  (F=29.69; p<0.0006). Donde la mayor cantidad de proteína en 
sangre se presenta en machos (21.14 ± 0,12) respecto a las hembras (20.33 ± 0,09) 
(Tabla 20). 
Tabla 20 Promedio ± error estándar de albúmina en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Promedio ± error estándar de albúmina en sangre de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Sexo n Albúmina (mg/dL) 
Macho 12 21,14 ± 0,12  a 
Hembra 24 20,33 ± 0,09  b 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
Figura 27 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre albúmina en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
72 
 
Micro hematocrito.  Al realizar el análisis ANOVA se determinó que existe 
un efecto significativo respecto a la aplicación de suplementos (dietas) (F=54.90; 
p<0.0001), donde las dietas comerciales más nucleótidos presentan mayor micro 
hematocrito en sangre (71.94 ± 0,74) respecto a las dietas comerciales (control) 
(58.64 ± 0,0.74) (Tabla 21). 
Tabla 21 Promedio ± error estándar de micro hematocrito en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Promedio ± error estándar de micro hematocrito en sangre de reproductores de 
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tratamiento n Micro hematocrito 
Nucleótidos 9 71,94 ± 0,74  a 
Vitaminas 9 66,67 ± 0,74  b 
Vit+Nucleótidos 9 64,58 ± 0,74  b 
Control 9 58,64 ± 0,74  c 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05). 
 
 
Figura 28 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre micro hematocrito en sangre de reproductores de Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre micro hematocrito en  
sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
73 
 
Al realizar el análisis ANOVA se encuentra un efecto positivo del tiempo 
(F=79.81; p<0.0001). Donde la mayor cantidad de hematocrito en sangre se 
presenta a los cuarenta y cinco días de evaluación (25.00 ± 0.39) respecto a los cero 
días de evaluación (15.96 ± 0,39)(Tabla 22). 
Tabla 22  Promedio ± error estándar de micro hematocrito en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Promedio ± error estándar de micro hematocrito en sangre de reproductores de 
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tiempo n Micro hematocrito 
0 36 15,96 ± 0,39  d 
15 36 17,74 ± 0,39  c 
30 36 18,73 ± 0,39  c 
45 36 25,00 ± 0,39  a 
60 36 22,12 ± 0,39  b 
75 36 24,34 ± 0,39  a 
90 36 21,61 ± 0,39  b 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05). 
 
Figura 29 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre micro hematocrito en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre micro hematocrito en sangre 
de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
74 
 
Por otro lado al realizar el análisis ANOVA se encuentra un efecto positivo 
para la interacción dieta*tiempo (F=7.30; p<0.0001). Donde al realizar una prueba de 
comparación de Tukey se determinó que existe una diferencia significativa entre 
cada uno de los tratamientos, donde a los cero días de evaluación la dieta comercial 
más nucleótidos presentan el mayor micro hematocrito en sangre (83.92 ± 0,24) a 
comparación del tratamiento dieta comercial a los setenta y cinco días de evaluación 
(40.42 ± 2.91)(Tabla 23). 
Tabla 23 Promedio ± error estándar de micro hematocrito en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Promedio ± error estándar de micro hematocrito en sangre de reproductores de 
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tiempo (días) Dieta  Micro hematocrito 
0 
Vitaminas  83,50 ± 0,24  a 
Nucleótidos 83,92 ± 0,91  a 
Vit+Nucleótidos 81,92 ± 1,89  ab 
Control 82,75 ± 1,06  a 
15 
Vitaminas  72,00 ± 1,80  cdef 
Nucleótidos 76,50 ± 2,41  abcd 
Vit+Nucleótidos 80,75 ± 2,56  abc 
Control 73,17 ± 1,24  bcdef 
30 
Vitaminas  78,67 ± 0,78  abc 
Nucleótidos 75,50 ± 1,30  abcd 
Vit+Nucleótidos 79,17 ± 1,05  abc 
Control 74,42 ± 1,66  abcde 
45 
Vitaminas  65,67 ± 2,58  efgh 
Nucleótidos 74,50 ± 1,29  abcde 
Vit+Nucleótidos 57,33 ± 2,63  hijk 
Control 48,17 ± 1,37  klm 
60 
Vitaminas  52,67 ± 1,82  ijk 
Nucleótidos 61,33 ± 1,76  ghi 
Vit+Nucleótidos 50,17 ± 1,64  kl 
Control 42,83 ± 1,25  lm 
75 
Vitaminas  54,42 ± 2,72  ijk 
Nucleótidos 64,17 ± 2,17  fgh 
Vit+Nucleótidos 50,25 ± 2,29  jkl 
Control 40,42 ± 2,91  m 
90 
Vitaminas  59,75 ± 1,35  ghij 
Nucleótidos 67,67 ± 1,66  defg 
Vit+Nucleótidos 52,50 ± 0,80  ijk 
Control 48,75 ± 1,45  klm 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05) 
 
75 
 
Figura 30 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre hematocrito en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre hematocrito en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
Figura 31 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre hematocrito en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre hematocrito en sangre de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
76 
 
Conteo Celular. Al realizar el análisis ANOVA se determinó que existe un 
efecto significativo respecto a la aplicación de suplementos (dietas) (F=29.82; 
p<0.0005), donde las dietas comerciales más vitaminas presentan mayor cantidad 
de células sanguíneas (13.50 ± 0,40) respecto a las dietas comerciales (control) 
(8.59 ± 0,40)(Tabla 24). 
Tabla 24 Promedio ± error estándar de celulas sanguíneas de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Promedio ± error estándar de celulas sanguíneas de reproductores de Trucha 
arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Tratamiento n Conteo e6 
Vitaminas 9 13,50 ± 0,40  a 
Nucleótidos 9 9,80 ± 0,40  b 
Vit+Nucleótidos 9 11,83 ± 0,40  a 
Control 9 8,59 ± 0,40  b 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común        
no son significativamente diferentes (p > 0.05). 
 
Figura 32  Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la cantidad de células sanguíneas de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre la cantidad de células 
sanguíneas de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
77 
 
Figura 33 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el conteo celular en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus 
mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre el conteo celular en sangre 
de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
Cortisol. Al realizar el análisis ANOVA se determinó que existe un efecto 
significativo respecto a la aplicación de suplementos (dietas) (F=6.63; p<0.0001), 
donde las dietas comerciales más vitaminas presentan mayor cantidad de cortisol en 
plasma sanguíneo (30.34 ± 0.11) respecto a las dietas comerciales (control) (3.78 ± 
0.10). Los valores obtenidos de cortisol sanguíneo fueron transformados a raíz 
cuadrada para que cumplan los supuestos de normalidad y homocedasticidad (Tabla 
25). 
 
 
 
 
 
 
 
 
78 
 
Tabla 25 Promedio ± error estándar del cortisol medido en plasma sanguíneo de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de evaluación 
Promedio ± error estándar del cortisol medido en plasma sanguíneo de 
reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el periodo de 
evaluación 
Tratamiento n Cortisol 
Vitaminas 9 26,34 ± 0,11  a 
Vit+Nucleótidos 9 17,59 ± 0,06  b 
Nucleótidos 9 10,71 ± 0,07  bc 
Control 9 3.78 ± 0.10  c 
 
Figura 34 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre cortisol en plasma sanguíneo de reproductores de Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss)  
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre cortisol en plasma 
sanguíneo de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Por otro lado al realizar el análisis ANOVA se encuentra un efecto positivo 
para la interacción dieta*tiempo*sexo (F=1.66; p=0.0402). Donde al realizar una 
prueba de comparación de Tukey se determinó que existe una diferencia 
significativa entre cada uno de los tratamientos, donde a los noventa días de 
evaluación las hembras administrados con la dieta comercial más vitaminas 
presentan el mayor cantidad de cortisol en plasma (34,98 ± 4,38) a comparación del 
79 
 
tratamiento dieta comercial más vitaminas en hembras a los cero días de evaluación 
(1,78 ± 0,72) (Tabla 26) 
Tabla 26 
 Promedio ± error estándar del cortisol medido en sangre de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el  periodo  
Promedio ± error estándar del cortisol medido en sangre de reproductores de  
Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss), durante el período de evaluación 
 
Tiempo (días) Sexo Dieta  Cortisol (ug/dL) 
0 Hembra 
Vitaminas  31,74 ± 4,52 
Nucleótidos 8,11 ± 1,53 
Vit+Nucleótidos 15,84 ± 1,96 
Control 1,78 ± 0,72 
15 Hembra 
Vitaminas  27,05 ± 4,32 
Nucleótidos 10,49 ± 1,10 
Vit+Nucleótidos 15,59 ± 1,49 
Control 1,29 ± 0,42 
30 Hembra 
Vitaminas  33,45 ± 4,50 
Nucleótidos 10,82 ± 0,75 
Vit+Nucleótidos 17,46 ± 1,39 
Control 3,73 ± 0,96 
45 Hembra 
Vitaminas  31,99 ± 4,49 
Nucleótidos 8,39 ± 1,55 
Vit+Nucleótidos 16,04 ± 1,97 
Control 2,02 ± 0,71 
60 Hembra 
Vitaminas  27,30 ± 4,29 
Nucleótidos 10,75 ± 1,16 
Vit+Nucleótidos 15,85 ± 1,48 
Control 1,67 ± 0,40 
75 Hembra 
Vitaminas  26,45 ± 4,39 
Nucleótidos 11,64 ± 0,79 
Vit+Nucleótidos 18,29 ± 1,40 
Control 4,60 ± 0,97 
90 Hembra 
Vitaminas  34,98 ± 4,38  
Nucleótidos 12,35 ± 0,86 
Vit+Nucleótidos 18,99 ± 1,41 
Control 4,34 ± 1,00 
0 Macho 
Vitaminas  23,95 ± 4,33 
Nucleótidos 10,63 ± 2,22 
Vit+Nucleótidos 17,54 ± 2,47 
Control 6,13 ± 2,46 
15 Macho 
Vitaminas  33,99 ± 5,58 
Nucleótidos 8,11 ± 1,21 
Vit+Nucleótidos 18,63 ± 3,47 
Control 5,73 ± 2,30 
30 Macho 
Vitaminas  25,63 ± 4,33 
Nucleótidos 13,16 ± 1,66 
Vit+Nucleótidos 19,36 ± 3,91 
Control 3,94 ± 1,41 
80 
 
n= número de unidades experimentales medidas; Medias con una letra común no 
son significativamente diferentes (p > 0.05). 
 
Figura 35 Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre cortisol en plasma sanguíneo de reproductores de Trucha arcoíris 
(Oncorhynchus mykiss) 
Comparación del efecto de dietas suplementadas sobre cortisol en plasma 
sanguíneo de reproductores de Trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
 
 
 
 
 
Tiempo (días) Sexo Dieta  Cortisol (ug/dL) 
45 Macho 
Vitaminas  24,21 ± 4,34 
Nucleótidos 10,86 ± 2,34 
Vit+Nucleótidos 17,80 ± 2,45 
Control 6,30 ± 2,44 
60 Macho 
Vitaminas  34,24 ± 5,54 
Nucleótidos 8,38 ± 1,11 
Vit+Nucleótidos 18,90 ± 3,39 
Control 6,07 ± 2,42 
75 Macho 
Vitaminas  26,45 ± 4,39 
Nucleótidos 13,98 ± 1,72 
Vit+Nucleótidos 20,19 ± 3,92 
Control 4,80 ± 1,37 
90 Macho 
Vitaminas  27,16 ± 4,50 
Nucleótidos 14,68 ± 1,82 
Vit+Nucleótidos 20,89 ± 3,96 
Control 5,54 ± 1,32 
81 
 
Correlación de variables  
 
Variables Hematológicas. Se encontraron correlaciones positivas entre 
glucosa y proteína (r= 0.64,p<0,0001), glucosa y albúmina (r= 0.57, p<0,0001), 
glucosa y cortisol (r= 0.42, p<0,0001) y glucosa y conteo de glóbulos rojos (r= 0.38, 
p<0,0001). Además existió una correlación negativa entre glucosa y hematocrito (r= -
0.36, p= <0,0001)(Tabla 27). 
Tabla 27 Coeficiente de correlación de Pearson para variables hematológicas de Oncorhynchus mykiss 
 Coeficiente de correlación de Pearson para variables hematológicas de 
Oncorhynchus mykiss 
 
Variables Reproductivas machos. Se encontraron correlaciones positivas 
entre volumen y concentración espermática (r= 0.94, p<0,0001), concentración 
espermática y tiempo de activación (r= 0.93, p<0,0001) y tiempo de activación y 
volumen seminal (r= 0.83, p=0,0008. Además existió una correlación negativa entre 
la concentración espermática y la mortalidad  (r= -0.70, p=0.00119)(Tabla 28). 
 
 
 
 
 
  Glucosa Proteína Albúmina  Hematocrito Cortisol Conteo  
Glucosa 1 
     
Proteína 0,64 1 
    
Albúmina  0,57 0,49 1 
   
Hematocrito -0,36 -0,3 -0,33 1 
  
Cortisol 0,42 0,22 0,38 NC 1 
 
Conteo GR 0,38 0,18 0,4 NC 0,7 1 
82 
 
Tabla 28 Coeficiente de correlación de Pearson para variables reproductivas en machos de Oncorhynchus mykiss 
Coeficiente de correlación de Pearson para variables reproductivas en machos de 
Oncorhynchus mykiss 
 
Variables Reproductivas Hembras. Se encontraron correlaciones positivas 
entre peso de ova y el tamaño de ova (r= 0.94, p=0,0005), peso de ova y fecundidad 
absoluta (r= 0.86, p=0,0068), peso de hembra y tamaño de ova (r= 0.87, p=0,0046) y 
peso de hembra y fecundidad absoluta (r= 0.82, p=0,0132), Además existió una 
correlación positiva entre el peso de hembra y peso de ova (r= 0.93, 
p<0,0001)(Tabla 29). 
Tabla 29 Coeficiente de correlación de Pearson para variables reproductivas en hembras de Oncorhynchus mykiss 
Coeficiente de correlación de Pearson para variables reproductivas en hembras de 
Oncorhynchus mykiss 
  Movilidad Mortalidad Volumen  Tiempo  Concentración PM 
Movilidad 1 
     
Mortalidad NC 1 
    
Volumen  -0,59 -0,61 1 
   
Tiempo  -0,67 -0,68 0,83 1 
  
Concentración  -0,68 -0,7 0,94 0,93 1 
 
Peso Macho NC NC NC 0,64 0,6 1 
  Tamaño 
Fecundidad 
Absoluta 
Fecundidad 
Relativa Peso de Ova 
Peso 
Hembra 
Tamaño 1 
    
F. Absoluta NC 1 
   
F. Relativa NC 0,77 1 
  
P. Ova 0,94 0,86 NC 1 
 
Peso Hembra 0,87 0,82 NC 0,93 1 
83 
 
 
Discusión  
 
El proyecto de investigación realizado presenta una nueva alternativa que 
contribuye a los nuevos manejos nutricionales respecto a las necesidades en etapas 
de reproducción de trucha arco iris, a continuación se describen resultados similares 
que han sido obtenidos en diferentes estudios los cuales permitirán demostrar la 
factibilidad de esta propuesta.  
Variables Reproductivas Machos  
Volumen seminal. En este estudio se determinó que los machos reproductores 
de trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss)  alimentados con dietas comerciales más 
vitaminas presentaron mayor volumen seminal que los machos reproductores 
alimentados con dietas comerciales; los machos suministrados vitaminas 
presentaron un volumen seminal de 1,50 ml a diferencia de los machos control que 
presentaron un volumen seminal de 1,13 ml. Estos resultados concuerdan con los 
resultados encontrados por Bravo, (2018) donde determina que la aplicación de 
vitaminas en dietas para machos reproductores de Oncorhynchus mykiss presentan 
mayores cantidades de volumen seminal de 3.93 ml en comparación de los animales 
alimentados únicamente con la dieta comercial 3.27 ml . Esto se puede atribuir al 
efecto que tiene la aplicación de hormonas y vitaminas en dietas de reproductores 
las cuales pueden aumentar el volumen seminal como consecuencia de una mayor 
producción de fluido por parte de los tubos seminíferos (Viveiros et al., 2002). 
Tiempo de activación y concentración espermática. Los machos 
reproductores de trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss)  alimentados con dietas 
comerciales más vitaminas presentaron mayor tiempo de activación con 167,33 
segundos, que los machos reproductores alimentados con dietas comerciales con 
84,67 segundos; estos resultados concuerdan con los resultados encontrados por 
84 
 
Bravo (2018) quien determina que la aplicación de vitaminas en la dieta comercial 
para machos reproductores de Oncorhynchus mykiss presentan mayor tiempo de 
activación con 95 segundos que machos reproductores alimentados únicamente con 
la dieta comercial con 60 segundos. Por otro lado los resultados obtenidos 
concuerdan con (Chacon, 2020) quien al evaluar semen de Piaractus brachypomu 
bajo concentraciones de sustancias antioxidante presentan mejores tiempos con 
66,67 segundos en comparación a tratamientos control quienes presentan 42,33 
segundos. 
Por otro lado la concentración espermática de los machos reproductores de 
trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss)  alimentados con dietas comerciales más 
vitaminas presentaron mayor concentración espermática con 15,6 x 106 cel/ml que 
los machos reproductores alimentados con dietas comerciales con 12,2 x 106 cel/ml;  
estos resultados concuerdan con los resultados obtenidos por Bustamante et al., 
(2018) quienes determinaron que la concentración espermática de machos 
reproductores de Oncorhynchus mykiss alimentados únicamente con la dieta control 
presentaran las menores concentraciones espermáticas con 6.8 x 106 cel/ml. 
(Domínguez-Castanedo et al., 2015) determinan también que la adición se 
sustancias antioxidantes con contenidos de vitaminas ayudan a la concentración 
espermática, donde determinaron que la adición de astaxantinas en Moenkhausia 
sanctaefilomenae mejora la concentración espermática presentando valores de entre 
9 a 25 x 108 cel/ml en comparación de grupos control que presentaron valores entre 
3 a 22 x 108 cel/ml. Por otro lado (Puerta Suárez et al., 2019) exponen que al utilizar 
un suplemento dietario, que contiene altas concentraciones de vitamina C y E 
mejora en un 20% la concentración espermática en relación al grupo control. Estos 
efectos se pueden atribuir a que las vitaminas actúan comúnmente como 
antioxidantes, en el caso de la vitamina C esta actúa con un efecto protector contra 
85 
 
el daño oxidativo mientras que la vitamina E puede reducir la peroxidación lipídica 
(Domínguez et al., 2015). Las vitaminas también juegan un papel muy importante en 
la esteroidogénesis y el mantenimiento de testosterona en testículos ayudando asi a 
evitar la oxidación de los gametos causado por los radicales libres (Gombe et al., 
1977).  
Movilidad y mortalidad espermática. Los resultados del presente estudio 
indican que tanto para la movilidad como para la mortalidad espermática, los 
machos reproductores alimentados con dietas comerciales más vitaminas presentan 
los mejores valores. Respecto a la movilidad presentan 34,66 % de espermatozoides 
móviles frente a 14,89 % de espermatozoides móviles de machos alimentados con 
dietas comerciales; para la mortalidad espermática presentan 15.65% de mortalidad 
frente a 26.66% de mortalidad de espermatozoides presente en machos alimentados 
con alimento comercial; estos resultados coinciden con los resultados obtenidos por 
Bravo,(2018) quien determinó que las dietas suplementadas con vitaminas 
presentan mayor cantidad de espermatozoides móviles que machos reproductores 
de Oncorhynchus mykiss alimentados con dietas comercial; esto también concuerda 
con Xu et al.,(2015) quien postula que la inclusión de 721.60 mg/kg de vitamina E 
afecta en la movilidad de espermatozoides en machos de rodaballo (Scophthalmus 
maximus). Por otro lado los resultados obtenidos en el estudio concuerdan con los 
obtenidos por Bravo,(2018) quien dice que la inclusión de vitaminas en el alimento 
balanceado reduce el porcentaje de mortalidad de los espermatozoide con 11.8% de 
mortalidad en comparación de machos de Oncorhynchus mykiss alimentados con 
alimento balanceado con un 17.3% de mortalidad. Esto se puede atribuir a la 
oxidación de compuestos los cuales pueden dañar proteínas y con ello causar la 
perdida de movilidad del espermatozoide y con ella también causar la muerte del 
mismo, al poseer una membrana con altas cantidades de ácidos grasos 
86 
 
poliinstaurados se vuelven más susceptibles a la oxidación de sus compuestos 
generando reacciones como la lipoperoxidación generando daños irreversibles 
(Hernández-Matos et al., 2010). Salamon & Maxwell, (2000) exponen que la poca 
cantidad de citoplasma y con ello la poca cantidad de antioxidantes presente en los 
espermatozoides lo vuelven susceptible a la oxidación de sus compuestos los cuales 
pueden afectar a la movilidad y en casos muy extremos la muerte celular. Por otro 
lado el adicionar antioxidantes exógenos como la vitamina C y E disminuyen el 
grado de peroxidación lipídica, esto en función de la vitamina C puede donar 
electrones al radical tocoperoxil de la vitamina E que puede ser oxidada. De esta 
manera puede darse el efecto de reciclaje del alfa tocoferol dando asi una acción de 
protección de las membranas lipídicas evitando asi la mortalidad o la perdida de 
movilidad del espermatozoide (Membrillo et al., 2003).  
Variables Reproductivas Hembras   
Tamaño de ova. El presente estudio determinó que las hembras 
reproductoras de trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss)  alimentados con alimento 
balanceado más vitaminas presentan mayor tamaño de ova con 6.5 mm respeto a 
hembras reproductoras alimentadas únicamente con alimento balanceado con 4.4 
mm. Estos resultados difieren de los encontrados por Lavens et al., (1999) quienes 
determinaron que el efecto de las vitaminas en dietas de rodaballo (Scophthalmus 
maximus) no presentan diferencias en el tamaño de ova respecto a las 
reproductoras alimentadas únicamente con alimento comercial. Esto se debe a que 
las vitaminas son compuestos orgánicos esenciales para la salud, crecimiento y 
reproducción de los animales, las vitaminas E y C en bajas concentraciones pueden 
afectar a la oxidación de las ovas reduciendo así sus capacidad fecundativa como 
también su calidad (Serezli et al., 2010).  
87 
 
Color de ova.  En el estudio realizado se determinó que las hembras 
reproductoras de Oncorhynchus mykiss  suplementadas con vitaminas presentaron  
mejor calidad en su coloración de ova tanto en  color rojo con 165.13 bits, verde 
166.05 bits, azul 123.03 bits e intensidad 161.63 bits frente a hembras reproductoras 
suministradas únicamente con alimento balanceado, cabe recalcar que este es el 
primer estudio que informa los efectos de la suplementación dietética de vitaminas y 
nucleótidos , sobre la colorimetría de las ovas de trucha arco iris (Oncorhynchus 
mykiss). 
Peso de ova. En el estudio realizado se determinó que las hembras 
reproductoras de Oncorhynchus mykiss  suministrados alimento balanceado más 
vitaminas presentaron mayor peso de ova, con un peso promedio de 95 g (total del 
desove)  y con un peso de 1.43 g promedio (muestra) respecto a hembras 
reproductoras alimentadas con alimento balanceado, las cuales presentaron un peso 
promedio de 62 g (total del desove) y un peso de 1.22 g promedio de muestra; estos 
resultados se asemejan a los obtenidos por Yıldız et al., (2020) donde determinan 
que la inclusión de ácidos grasos y vitaminas mejoran e influyen en el peso de ovas 
obtenidas en hembras reproductoras de trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss) 
donde las hembras reproductoras alimentadas únicamente con alimento comercial 
presentan menor peso promedio de ova (77.2 g total). Esto se lo puede atribuir a que 
las vitaminas son elementos esenciales para el desarrollo folicular, en algunos casos 
la deficiencia de estas vitaminas pueden perjudicar al proceso de formación de 
óvulos y con ello afectar también así a la fertilidad de los mismos (González et al., 
2019), su característica antioxidante también juega un papel importante donde la 
deficiencia de vitamina E y C pueden provocar la inhibición de la maduración de las 
gónadas (Sanz, 2009).  
88 
 
Fecundidad. Respecto a la fecundidad relativa y absoluta se determinó que 
las hembras reproductoras de trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss)  alimentados 
con alimento balanceado más vitaminas presentan mayor fecundidad absoluta con 
6795 Ovocitos/kg ♀ y una mayor fecundidad relativa de 4605 Ovocitos/kg ♀ en 
comparación a las hembras reproductoras alimentadas únicamente con alimento 
comercial; esto concuerda con un estudio similar realizado por Yıldız et al., (2020) 
quienes afirman que las hembras reproductoras de Oncorhynchus mykiss 
alimentadas con alimento comercial más ácidos grasos y vitaminas presentan mayor 
fecundidad absoluta (3819 Ovocitos/kg ♀) y la fecundidad relativa (1468,8 
Ovocitos/kg ♀), otro estudio realizado por Pastor, (2017) en tilapia (Oreochromis 
niloticus) afirma que la fecundidad absoluta es mejor al suministrar estradiol más 
vitaminas donde se obtiene 876 Ovocitos/g ♀ frente al tratamiento control que 
presenta 626 Ovocitos/g ♀. Esto se puede atribuir que las vitaminas presentan un 
poder antioxidante las cuales pueden evitar una degeneración de las grasas 
naturales presentes en los ovocitos, las cuales son fundamentales en la 
reproducción al ser parte de la membrana celular (Sanz, 2009). En el caso de la 
vitamina E, esta se puede transportar desde el tejido periférico hasta los ovocitos, 
evitando así un alto porcentaje de ovas anormales e incrementando su fecundidad, 
la vitamina C por otro lado ayuda y participa en el proceso de vitelogénesis 
ayudando a la correcta formación de ovocitos (Carrillo, 2009). 
Variables Hematológicas 
Glucosa. En el estudio realizado se determinó que las cantidades de glucosa 
más elevadas fueron encontradas en los individuos alimentados con dietas 
balanceadas suplementadas con vitaminas o nucleótidos; Estos resultados 
concuerdan con los encontrados por (Ortuño et al., 2003) quienes evaluaron la 
adición de vitaminas C y E en dietas balanceadas de Dorada (Sparus aurata L.) 
89 
 
donde determinaron que los individuos suplementados con vitaminas presentan 
mayores cantidades de glucosa a comparación de individuos no suplementados. 
Otros resultados encontrados por (de Andrade et al., 2007) concuerdan que la 
adición de vitamina C y E en dietas de Pirarucu (Arapaima gigas) producen un 
incremento en las cantidades de glucosa presente en sangre. Por otro lado 
Tahmasebi-Kohyani et al., (2012) difieren con los resultados obtenidos ya que 
exponen que la adición de nucleótidos en dietas de Oncorhynchus mykiss presentan 
menor cantidad de glucosa en sangre. Esto se puede atribuir a que la Vitamina C  y 
E son compuestos importantes que influyen en el sistema inmune de los individuos, 
de esta manera se puede reducir los niveles altos de estrés y con ello la síntesis de 
glucosa en sangre (Montero et al., 2001). Al existir señales como el estrés, se 
producen reacciones vía circulación periferia al tejido renal, de esta manera se da un 
primer estimulo que inicia con las respuestas secundarias como es el glicógeno 
hepático (gluconeogénesis), de esta manera el organismo busca distribuir de la 
energía dando asi un aumento de glucosa (Ocampo & Camberos, 1999). La 
implementación de nucleótidos también influyen en las cantidades de glucosa 
puestos que estos intervienen también en procesos de síntesis de compuestos así 
como también influyen en el sistema inmune del animal (Guo et al., 2016) 
Proteína y albúmina. En el estudio realizado se determinó que las 
cantidades de proteína y albúmina  más elevadas fueron encontradas en los 
individuos alimentados con dietas balanceadas suplementadas con vitaminas o 
nucleótidos. Estos resultados concuerdan con los encontrados por (Tahmasebi-
Kohyani et al., 2012) quienes determinaron que la adición de nucleótidos a las dietas 
de Oncorhynchus mykiss incrementa las cantidades de proteína y albúmina en 
sangre. (Vani et al., 2011) concuerda también con que la adición de vitaminas a las 
dietas de Catla catla (Ham). Presentan mayores cantidades de proteína y albúmina 
90 
 
en sangre. Esto se puede atribuir a que en el caso de las vitaminas estos actúan 
como cofactores enzimáticos en el proceso del metabolismo energético o la síntesis 
de proteínas (Garzón & Espinosa, 2019). En el caso de la vitamina C y E actúan 
como antioxidantes de esta manera pueden proteger a las macromolécula como son 
las proteínas, así se puede evitar la oxidación descontrolada por la presencia de 
radicales libres que se producen por acción del metabolismo (Soto et al., 2016).Por 
otro lado los nucleótidos influyen en la formación de proteínas al ser subunidades 
que conforman los ácidos nucleicos pueden sintetizar proteínas y con ello albumina 
(Sarsangi Aliabad, 2017).        
 Hematocrito y Conteo de glóbulos rojos. En el estudio realizado se 
determinó que las cantidades de hematocrito y conteo de glóbulos rojos más 
elevados fueron encontrados en los individuos alimentados con dietas balanceadas 
suplementadas con vitaminas o nucleótidos. Estos resultados concuerda con los 
obtenidos por (Vani et al., 2011)  quien al adicionar vitaminas a las dietas de Catla 
catla (Ham) pudo observar que las cantidades de glóbulos rojos y el porcentaje de 
hematocrito fueron mayores que el de los individuos alimentados con dietas 
comerciales. Por otro lado (Tahmasebi-Kohyani et al., 2012) y (Yousefi et al., 2016) 
concuerdan que al suplementar las dietas de Oncorhynchus mykiss aumentan las 
cantidades de hematocrito, glóbulos rojos y hemoglobina. En el caso de las 
vitaminas pueden ser muy beneficiosos, su gran efecto antioxidante puede alargar la 
vida de los eritrocitos, también las vitaminas pueden ayudar en la destrucción de 
radicales libres y de esta manera también captar oxígeno, asi se puede evitar 
valores bajos en las medidas de hematocrito o la cantidad de eritrocitos (Cañón, 
2010).  
Cortisol. En el estudio realizado se determinó que las cantidades de cortisol 
en plasma sanguíneo más elevados fueron encontrados en los individuos 
91 
 
alimentados con dietas balanceadas suplementadas con vitaminas y nucleótidos. 
Estos resultados concuerda con los encontrados por (Montero et al., 1999) quienes 
al adicionar vitamina C y E a dietas de Dorada (Sparus aurata) y tener altas 
densidades de individuos observaron que los niveles de cortisol fueron más altos 
que peces alimentados únicamente con la dieta comercial. En otro estudio realizado 
por (Montero et al., 2001) afirma que la inclusión de vitamina E no produce la 
elevación de cortisol en plasma sanguíneo en individuos de Dorada (Sparus aurata). 
(Ortuño et al., 2003) observó que al adicionar vitamina C y E en dietas balanceadas 
de Dorada (Sparus aurata) y sometidos a estrés presentan valores bajos de cortisol 
respecto a individuos de grupos control. Respecto a la inclusión de nucleótidos 
(Tahmasebi-Kohyani et al., 2012)  y (Yousefi et al., 2016) proponen que la inclusión 
de estos en la alimentación y someter a un estrés a individuos de Oncorhynchus 
mykiss provocará niveles bajos de cortisol en plasma sanguíneo en comparación a 
grupos control. La presencia de cortisol afecta notablemente al balance hidromineral 
así como también a la redistribución de recursos energéticos. Este proceso se ve 
regulado por el sistema HPI (Hipotalamo-Hipofisiario-Intrarrenal) el cual al activarse 
se dedica a la síntesis y liberación de catecolaminas y cortisol al plasma generando 
así reacciones secundarias que exigen la movilización de recursos energéticos para 
evitar la acción del HPI, por otro lado las funciones cardiacas, y pulmonares se ven 
disminuidas y con ello el equilibrio energético del animal se ve afectado 
negativamente perjudicando así a las funciones de la reproducción (Cepa et al., 
2019). Otro efecto de cortisol se ve relacionado con la esteroidogénesis gonadal, en 
donde los niveles de LH y la  producción de DHP se ven afectados,  por un lado se 
tiene que la LH juega un papel importante en el proceso de maduración del folículo, 
y la DHP la cual activa la acción de la 11KT al inducir la actividad de 11-HDS que 
convierte el cortisol en cortisona sustancias relacionadas con la producción de 
gametos sexuales como por ejemplo la espermatogénesis, además de la producción 
92 
 
de FSH la cual es importante en la regulación del proceso de esteroidogénesis 
(Carrillo, 2009). 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
93 
 
Capítulo V 
Conclusiones y Recomendaciones 
Conclusiones  
 
La adición de vitaminas en dietas balanceadas mostró un efecto positivo en 
gametos masculinos de Oncorhynchus mykiss. La inclusión de 2400 UI de vitamina 
C y 900 UI de vitamina E reportó los mejores resultados respecto a Volumen seminal 
con un incremento del 32.74%, tiempo de activación con un incremento de 82.66 
segundos y la concentración espermática con un incremento del 27.86% respecto al 
tratamiento control. 
La adición de nucleótidos en dietas balanceadas de Oncorhynchus mykiss  a 
razón de 4 g, por otro lado mostró un efecto positivo respecto a la mortalidad 
espermática con un disminución del 89.38% de espermatozoides muertos, respecto 
al tratamiento control. 
La adición de vitaminas en dietas balanceadas de Oncorhynchus mykiss mostró 
un efecto positivo en gametos femeninos. La inclusión de 2400 UI de vitamina C y 
900 UI de vitamina E reportó mejores resultados respecto a tamaño de ova con un 
aumento del 47.72% y el peso de ova con un aumento del 17.21% respecto al 
tratamiento control. 
Por otro lado, la adición de nucleótidos en dietas balanceadas de Oncorhynchus 
mykiss a razón de 4 g, mostró un efecto positivo respecto a la fecundidad relativa 
con un aumento del 43.13% respecto al tratamiento control. 
Las vitaminas suplementadas en alimentos de Oncorhynchus mykiss presenta 
un efecto en el estado sanitario de los peces, mejorando así los indicadores 
hematológicos como glucosa en 60.26 mg/dL, albúmina  en 6.71 mg/dL y conteo 
94 
 
celular con 4.91x 106 cel/ml respecto a valores obtenidos en el tratamiento control. 
Sin embargo la adición de nucleótidos mejora indicadores hematológicos como 
proteína en 14.64 mg/dL y hematocrito en 13.3% con respecto a los valores 
encontrados en el tratamiento control.  
Los machos de Oncorhynchus mykiss suplementados con vitaminas obtuvieron 
un incremento de 21,62 ug/mL de cortisol a los 90 días de evaluación, los cuales 
también demostraron un aumento significativo en volumen seminal, tiempo de 
activación y concentración espermática en relación al tratamiento control.  
Las hembras de Oncorhynchus mykiss suplementados con vitaminas obtuvieron 
un incremento de 29,64 ug/mL de cortisol a los 90 días de evaluación, las cuales 
presentaron un aumento significativo respecto al tamaño y peso de la ova, en 
relación al tratamiento control. 
Recomendaciones  
 
Para mejorar las características de los gametos sexuales tanto en machos como 
hembras se recomienda la suplementación con vitamina C (2400 UI) y vitamina E 
(900 UI) 
Para evitar contratiempos respecto a la obtención de ovas, se recomienda 
realizar actividades que no comprometan el nivel de estrés del animal, esto puede 
ser perjudicial para el proceso de desove 
Para realizar el análisis se las muestra de semen obtenidas es necesario 
realizarlo de manera inmediata, de esta manera se evitará cambios en parámetros 
como la mortalidad espermática o el tiempo de activación  
95 
 
Para el proceso de obtención de muestras es necesario contar con los 
implementos y las zonas adecuadas para evitar la contaminación o pérdidas de 
muestras 
Una vez obtenidas las muestras sanguíneas es necesario realizar el proceso de 
separación entre plasma y sangre, es necesario conservar por separado dichas 
muestras, así se podrá evitar la contaminación del plasma sanguíneo 
Los análisis sanguíneos como la glucosa se debe realizar en el menor tiempo 
posible, de esta manera se evitaran la degradación química de las muestras. 
Una vez realizada la marcación digital es necesario realizar un chequeo 
posterior, esto con la finalidad de asegurar la correcta implantación de chip evitando 
así la perdida de material y de información 
Se recomienda realizar pruebas de reproducción bajo esta metodología en 
diferentes especies 
Se recomienda realizar ensayos donde se pueda evaluar el efecto de la 
alimentación donde exista un incremento de la densidad de carga animal  
 
 
 
 
 
 
 
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